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            bradford法定量蛋白質(zhì)的實(shí)驗(yàn)原理

            閱讀:3910      發(fā)布時(shí)間:2016-4-20
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            Bradford法又稱考馬斯亮藍(lán)法,是 Bradford 于 1976 年建立起來(lái)的一種蛋白質(zhì)濃度的測(cè)定方法。bradford法定量蛋白質(zhì)的原理是馬斯亮藍(lán)(CBB)測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法的一種??捡R斯亮藍(lán)在游離狀態(tài)下呈紅色,大光吸收在488nm;以下是bradford法定量蛋白質(zhì)的原理及含量測(cè)定流程
            bradford法定量蛋白質(zhì)的原理
            考馬斯亮藍(lán)(CBB)測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法的一種。考馬斯亮藍(lán)在游離狀態(tài)下呈紅色,大光吸收在488nm;當(dāng)它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)榍嗌?,蛋白質(zhì)—色素結(jié)合物在595nm波長(zhǎng)下有大光吸收。其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比,因此可用于蛋白質(zhì)的定量測(cè)定。蛋白質(zhì)與考馬斯亮藍(lán)結(jié)合在2min左右的時(shí)間內(nèi)達(dá)到平衡,完成反應(yīng)十分迅速;其結(jié)合物在室溫下1h內(nèi)保持穩(wěn)定。該法試劑配制簡(jiǎn)單,操作簡(jiǎn)便快捷,反應(yīng)非常靈敏,靈敏度比Lowry法還高4倍,可測(cè)定微克級(jí)蛋白質(zhì)含量,測(cè)定蛋白質(zhì)濃度范圍為0~1 000μg/ml,是一種常用的微量蛋白質(zhì)快速測(cè)定方法。
            bradford法定量蛋白質(zhì)的含量流程:
            該方法用于大多數(shù)蛋白質(zhì)的定量是比較的,但不適用于小分子堿性多肽的定量。如核糖酸酶或溶菌酶。去污劑的濃度超過(guò)0.2%影響測(cè)定結(jié)果。如TritonX-100、SDS、NP-40等。
            1.Bradford濃染液的配制:將100mg考馬斯亮藍(lán)G-250溶于50ml 95%乙醇,加入100ml85%的磷酸,然后,用蒸餾水補(bǔ)充1000ml,此染液放4℃少6個(gè)月保持穩(wěn)定。
            2.標(biāo)準(zhǔn)曲線蛋白質(zhì)樣本的準(zhǔn)備:盡量使用與待測(cè)樣本性質(zhì)相近的蛋白質(zhì)作為標(biāo)準(zhǔn)品,例如測(cè)定抗體,可用純化的抗體作為標(biāo)準(zhǔn)。如果待測(cè)樣本是未知的,也可用抗體作為標(biāo)準(zhǔn)蛋白。通常在20ug—150ug/100ul之間繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
            3.將待測(cè)樣本溶于緩沖溶液中,該緩沖溶液應(yīng)與制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的緩沖溶液相同(好用PBS)。
            4.按1:5用蒸餾水稀釋濃染料結(jié)合溶液,如出現(xiàn)沉淀,過(guò)濾除去。
            5.每個(gè)樣本加5ml稀釋的染料結(jié)合溶液,作用5~30min。染液與蛋白質(zhì)結(jié)合后,將由紅色變?yōu)樗{(lán)色,在595nm波長(zhǎng)下測(cè)定其吸光度。注意,顯色反應(yīng)不得超過(guò)30min.
            6.根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算待測(cè)樣本的濃度。
            注意:
            考馬斯亮藍(lán)和皮膚中蛋白質(zhì)通過(guò)范德華力結(jié)合,反應(yīng)快速,并且穩(wěn)定,無(wú)法用普通試劑洗掉。待一兩周左右,皮屑細(xì)胞自然衰老脫落即可無(wú)礙。
            bradford法定量蛋白質(zhì)的原理是根據(jù)蛋白質(zhì)可與考馬斯亮藍(lán)G-250 定量結(jié)合。當(dāng)考馬斯亮藍(lán) G-250 與蛋白質(zhì)結(jié)合后,其對(duì)可見(jiàn)光的大吸收峰從 465nm 變?yōu)?595nm。一般情況,當(dāng)溶液中的蛋白質(zhì)濃度增加時(shí),顯色液在 595nm 處的吸光度基本能保持線性增加,因此可以用bradford法來(lái)測(cè)定溶液

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