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            PCR實驗操作常見問題及解決方法

            時間:2019/1/17閱讀:4565
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            1. cDNA產(chǎn)量的很低
            可能的原因:
            *RNA模板質(zhì)量低
            *對mRNA濃度估計過高
            *反應(yīng)體系中存在反轉(zhuǎn)錄酶抑制劑或反轉(zhuǎn)錄酶量不足
            *同位素磷32過期
            *反應(yīng)體積過大,不應(yīng)*過50μl

            2. 擴增產(chǎn)物在電泳分析時沒有條帶或條帶很淺
            *常見的原因在于您的反應(yīng)體系是PCR的反應(yīng)體系而不是RT-PCR的反應(yīng)體系
            *與反應(yīng)起始時RNA的總量及純度有關(guān)
            *建議在試驗中加入對照RNA
            *鏈的反應(yīng)產(chǎn)物在進行PCR擴增時,在總的反應(yīng)體系中的含量不要*過1/10
            *建議用Oligo(dT)或隨機引物代替基因特異性引物(GSP)用于鏈合成。由于RNA模板存在二級結(jié)構(gòu),如環(huán)狀結(jié)果,有可能導(dǎo)致GSP無法與模板退火;或SSⅡ反轉(zhuǎn)錄酶無法從此引物進行有效延伸。
            *目的mRNA中含有強的轉(zhuǎn)錄中止位點,可以試用以下方法解決:
            a. 將鏈的反應(yīng)溫度提高至50℃。
            b. 使用隨機六聚體代替Oligo(dT)進行鏈反應(yīng)。

            3. 產(chǎn)生非特異性條帶
            *用RT陰性對照檢測是否被基因組DNA污染。如果RT陰性對照的PCR結(jié)果也顯示同樣條帶,則需要用DNase I重新處理樣品。
            *在PCR反應(yīng)中,非特異的起始擴增將導(dǎo)致產(chǎn)生非特異性結(jié)果。在低于引物Tm 2至5℃的溫度下進行退火,降低鎂離子或是目的DNA的量將減少非特異性結(jié)果的產(chǎn)生。
            *由于mRNA剪切方式的不同,根據(jù)選擇引物的不同將導(dǎo)致產(chǎn)生不同的RT-PCR結(jié)果。

            4. 產(chǎn)生彌散(smear)條帶
            *在PCR反應(yīng)體系中鏈產(chǎn)物的含量過高
            *減少引物的用量
            *優(yōu)化PCR反應(yīng)條件/減少PCR的循環(huán)次數(shù)
            *在用DNase處理被DNA污染的RNA樣品時,其產(chǎn)生的寡核苷酸片段會產(chǎn)生非特異性擴增,一般會顯示為彌散背景。

            5. 產(chǎn)生大分子量的彌散條帶
            *大多數(shù)情況下是由于退火溫度過低而導(dǎo)致的非特異性的起始及延伸產(chǎn)生的
            *對于長片段的PCR,建議將反應(yīng)體系中cDNA的濃度稀釋至1:10(或1:100-1:200)

            6. 在無反轉(zhuǎn)錄酶的情況下,對照RNA獲得擴增結(jié)果
            *通常是由于對照RNA中含有痕量DNA而導(dǎo)致的。由于進行體外轉(zhuǎn)錄時不可能將所有的DNA模板消除。建議可將鏈cDNA稀釋1:10、1:100、1:1000倍以消除DNA污染所造成的影響。
            *有可能是引物二聚體的條帶

            7. 擴增產(chǎn)物滯留在加樣孔中
            *有可能是由于模板量過高而導(dǎo)致PCR結(jié)果產(chǎn)生了高分子量的DNA膠狀物。建議將鏈結(jié)果至少稀釋100倍再進行二次擴增。
            *另外,在二次PCR時使用的退火溫度如果比引物的Tm值低5℃,可以將退火溫度適當增高或進行熱啟動以提高特異性。

            8. SSⅢ與SSⅡ有何不同?
            *具有更高的熱穩(wěn)定性(達50℃)
            *具有更長的半衰期(達220分鐘)
            *對PCR無抑制
            *干冰運輸
            *Tdt活性更低
            9. 為什么有人更喜歡用SSⅢ而不是ThermoScript?

            ThermoScript如果保存不當會引起活性很快降低,SSⅢ則更穩(wěn)定。

            10. 為什么使用基因特異性引物(GSP)?
            GSP在擴增低豐度的轉(zhuǎn)錄本時是好的。OligodT引物建議用于高質(zhì)量RNA及全長轉(zhuǎn)錄本的逆轉(zhuǎn)錄;隨機引物用于mRNA片段的逆轉(zhuǎn)錄。

            11. 什么情況下需要使用RNase H?
            在輪PCR中RNA/DNA雜合體不能正常變性時

            12. 根據(jù)不同的目的選擇不同的系統(tǒng):
            目的 建議
            RT與PCR使用不同的引物
            或需要靈活選擇PCR DNA聚合酶 兩步法RT-PCR系統(tǒng)
            高靈敏度 一步法或兩步法RT-PCR系統(tǒng)
            高特異性 含有適當?shù)腄NA聚合酶的兩步法RT-PCR系統(tǒng)
            或具有高保真Platinum Taq酶的一步法RT-PCR系統(tǒng)
            高保真度 含有Pfx Taq酶的兩步法RT-PCR系統(tǒng)
            長的反轉(zhuǎn)錄結(jié)果 通常使用兩步法RT-PCR系統(tǒng)可達到結(jié)果
            含Elongase酶的一步法RT-PCR系統(tǒng)

            二、Generacer
            1. 如何針對Generacer試劑盒設(shè)計基因特異性引物(GSP)?
            使用5’或3’RACE試劑都需要至少一條基因特異性引物,您在設(shè)計引物時需要注意以下幾點要求:
            *50-70%的GC含量,以提高引物熔點(Tm)
            *23-28個堿基長度,以提高引物特異性
            *降低3’端GC含量,將引物非特異性結(jié)合的可能性降至低

            2. 為什么得不到RACE產(chǎn)物?
            *加入Hela對照
            *低質(zhì)量的RNA模板
            *逆轉(zhuǎn)錄失敗,SSII和SSIII非常適用于長模板cDNA的合成
            *目的基因豐度太低,可以通過提高PCR的循環(huán)次數(shù)來解決,建議使用巢式PCR
            *目的基因沒有表達,可以通過使用兩條GSPs來分析cDNA中是否含有目的基因
            *目的基因太長而不適合進行反轉(zhuǎn)錄,建議使用GeneRacer試劑盒中的Oligo dT來得到全長cDNA,使用隨機引物或與模板的5’端盡可能近的GSP進行PCR。
            *cDNA模板屬于困難模板,可以通過以下方法解決:優(yōu)化PCR反應(yīng)參數(shù)及反應(yīng)體系;降低退火溫度;使用5-10%的DMSO幫助通過高GC含量區(qū);使用高保真度和高延伸能力的酶進行PCR反應(yīng)。

            3. RACE的PCR結(jié)果有雜帶
            RACE PCR雜帶或非特異性PCR條帶可能是由于以下原因:
            *GSP與其他cDNA的非特異性結(jié)合會導(dǎo)致在擴增目的產(chǎn)物時得到無關(guān)產(chǎn)物。
            *GeneRacer引物和cDNA的非特異性結(jié)合會導(dǎo)致產(chǎn)生一端帶有GeneRacer引物序列的PCR產(chǎn)物。
            *RNA降解。
            *PCR管或試劑污染。
            注意:雜帶一般是因為沒有優(yōu)化PCR條件,可以加入陰性對照來確定。

            4. 得不到全長的5’RACE PCR產(chǎn)物
            *CIP反應(yīng)后的RNA降解產(chǎn)生了新的帶有5’磷酸的斷裂模板,可以同GeneRacer RNA Oligo連接。一定要小心操作,保證RNA無降解。
            *CIP脫磷酸不*,可以增加反應(yīng)中CIP的量或減少RNA的量。
            *PCR產(chǎn)生了雜帶,并不是真正的連接產(chǎn)物,可以使用上述建議優(yōu)化PCR。

            二、Generacer
            1. 如何針對Generacer試劑盒設(shè)計基因特異性引物(GSP)?
            使用5’或3’RACE試劑都需要至少一條基因特異性引物,您在設(shè)計引物時需要注意以下幾點要求:
            *50-70%的GC含量,以提高引物熔點(Tm)
            *23-28個堿基長度,以提高引物特異性
            *降低3’端GC含量,將引物非特異性結(jié)合的可能性降至低

            2. 為什么得不到RACE產(chǎn)物?
            *加入Hela對照
            *低質(zhì)量的RNA模板
            *逆轉(zhuǎn)錄失敗,SSII和SSIII非常適用于長模板cDNA的合成
            *目的基因豐度太低,可以通過提高PCR的循環(huán)次數(shù)來解決,建議使用巢式PCR
            *目的基因沒有表達,可以通過使用兩條GSPs來分析cDNA中是否含有目的基因
            *目的基因太長而不適合進行反轉(zhuǎn)錄,建議使用GeneRacer試劑盒中的Oligo dT來得到全長cDNA,使用隨機引物或與模板的5’端盡可能近的GSP進行PCR。
            *cDNA模板屬于困難模板,可以通過以下方法解決:優(yōu)化PCR反應(yīng)參數(shù)及反應(yīng)體系;降低退火溫度;使用5-10%的DMSO幫助通過高GC含量區(qū);使用高保真度和高延伸能力的酶進行PCR反應(yīng)。

            3. RACE的PCR結(jié)果有雜帶
            RACE PCR雜帶或非特異性PCR條帶可能是由于以下原因:
            *GSP與其他cDNA的非特異性結(jié)合會導(dǎo)致在擴增目的產(chǎn)物時得到無關(guān)產(chǎn)物。
            *GeneRacer引物和cDNA的非特異性結(jié)合會導(dǎo)致產(chǎn)生一端帶有GeneRacer引物序列的PCR產(chǎn)物。
            *RNA降解。
            *PCR管或試劑污染。
            注意:雜帶一般是因為沒有優(yōu)化PCR條件,可以加入陰性對照來確定。

            4. 得不到全長的5’RACE PCR產(chǎn)物
            *CIP反應(yīng)后的RNA降解產(chǎn)生了新的帶有5’磷酸的斷裂模板,可以同GeneRacer RNA Oligo連接。一定要小心操作,保證RNA無降解。
            *CIP脫磷酸不*,可以增加反應(yīng)中CIP的量或減少RNA的量。
            *PCR產(chǎn)生了雜帶,并不是真正的連接產(chǎn)物,可以使用上述建議優(yōu)化PCR。

            三、PCR
            在進行PCR時:
            *請確保您沒有使用過量的起始DNA或者過高濃度的引物,也沒有加入過量的Mg++
            *請確保您使用了恰當?shù)耐嘶饻囟?/span>
            *請確保您沒有使用過量的DNA聚合酶

            四、引物
            1. 應(yīng)該選擇哪種純化方法?
            取決于實驗?zāi)康暮鸵锏拈L度
            2. 為什么我訂購了50nmol,但是收到卻只有40nmol?
            50nmol是起始量
            3. 怎樣制備100μM的儲液?
            體積(μl)=質(zhì)檢報告上的nmol數(shù)目×10
            4. 怎樣設(shè)計引物?
            *一般長度20-30bp;
            *至少50%的GC含量;
            *避免引物二聚體和二級結(jié)構(gòu);
            *引物對的Tm值應(yīng)該接近。
            5. 引物序列有插入或缺失?
            *使用上游和下游引物多測幾個克隆。
            *請選擇正確的純化方法。
            6. PCR無結(jié)果?
            *請檢查引物設(shè)計是否正確;
            *請檢測OD讀數(shù)是否正確;
            *做一個陽性對照和一個陰性對照

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