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            上海凱朗儀器設備廠

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            實驗儀器在大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備及轉(zhuǎn)化應用

            2012-5-18 閱讀(2822)

            一、實驗原理 

                                             體外連接的重組DNA分子導入合適的宿主細胞中才能大量的進行復制、增殖和表達。研究發(fā)現(xiàn),用含Ca2+  的溶液處理大腸桿菌細胞會易于吸收外源DNA。大腸桿菌吸收外源DNA的過程被稱為轉(zhuǎn)化。細菌處于容易吸收外源DNA的狀態(tài)稱為感受態(tài)。用理化方法可以誘導細胞進入感受態(tài),如電轉(zhuǎn)化法、CaCL2法。

            CaCL2法是目前實驗室常用的制備感受態(tài)細胞的方法,其原理是使細菌處于0°C 、CaCl2低滲溶液中,細胞膨脹成球形,細胞膜的通透性發(fā)生改變,外源DNA附著于細胞膜表面,經(jīng)42°C短時間熱沖擊處理,促進細胞吸收DNA復合物。宿主細胞一般是限制―修飾系統(tǒng)缺陷的變異株,即不含限制性內(nèi)切酶和甲基化酶的突變株,而質(zhì)粒載體攜帶有某一抗生素抗性基因,如抗氨卞青霉素的基因(AP+)。若將轉(zhuǎn)化的細胞涂布與于含氨卞青霉素的平板上,則只有那些含有被轉(zhuǎn)化質(zhì)粒的細胞才能生存并生長增殖。從而可以篩選出哪個克隆含有質(zhì)粒。

                                            本實驗以E.coli JM109菌株為受體細胞,用CaCl2處理受體菌使其處于感受態(tài),然后與pUC18質(zhì)粒共保溫實現(xiàn)轉(zhuǎn)化。將經(jīng)過轉(zhuǎn)化后的全部受體細胞進行適當稀釋,在含有氨卞青霉素的平板培養(yǎng)基上培養(yǎng),只有轉(zhuǎn)化體才能存活,而未有轉(zhuǎn)化的受體細胞則因無抵抗氨卞青霉素的能力而死亡。轉(zhuǎn)化子經(jīng)過擴增后,可將轉(zhuǎn)入的質(zhì)粒DNA分離提取出來,用于電泳分析、限制性內(nèi)切酶圖譜的制作以及DNA測序等實驗。

            二、儀器及試劑

            1. 儀器:

                    恒溫搖床、電熱恒溫培養(yǎng)箱、電熱恒溫水浴鍋超凈工作臺、分光光度計、高速冷凍離心機、臺式離心機。

                    2. 材料

            E.coli JM109受體菌、質(zhì)粒pUC18。

            3. 試劑:

            LB培養(yǎng)液(1L):

                胰蛋白胨                                  10g

                酵母粉                                      5g

                NaCl                                         10g(高鹽)或5g(低鹽)

               氨芐青霉素(Ampicillin)     100mg/ml

            在三角瓶中將胰蛋白胨 10g,酵母粉 5g以及 NaCl  5g溶于1L的重蒸水中并高壓滅菌。待冷卻至55℃,向溶液中加入1.5ml  100mg/ml 的氨芐青霉素。然后貯存于4℃?zhèn)溆谩?br />
                    LB平板培養(yǎng)基:

                                      胰蛋白胨            10g

                                      酵母粉                 5g

                                      NaCl                    10g或5g ,

                                      瓊脂                    13g 

            在三角瓶中依次將上述配方加入1L的重蒸水中并高壓滅菌。待培養(yǎng)基降溫至50℃,取出培養(yǎng)基并輕輕旋轉(zhuǎn)以使溶解的瓊脂均勻分布于整個培養(yǎng)基溶液中,根據(jù)需要加入氨芐青霉素,然后可直接從三角瓶中倒出培養(yǎng)基鋪制平板。90mm直徑的培養(yǎng)皿約需30~50ml培養(yǎng)基。培養(yǎng)基*凝結(jié)后,倒置平皿并貯存于4℃?zhèn)溆谩?br />
                    其它試劑:   0.1M CaCl2溶液、滅菌蒸餾水

                三、操作步驟

                    1. 感受態(tài)細菌的制備:

                  (1)用接種環(huán)從E.coli JM109菌平板上挑取一單克隆菌落,接種于裝有5ml LB液體培養(yǎng)基的試管中中,37℃ 220 rpm振蕩培養(yǎng)過夜(12~16h)。

                 (2)取0.5 ml過夜菌液接種到裝有50ml LB液體培養(yǎng)基三角瓶中中,37℃,220 rpm振蕩培養(yǎng)2-3h,隔20-30min測量OD600值,至OD600值為0.3-0.4。無菌條件下將細菌轉(zhuǎn)至1.5ml 離心管中,每管1ml菌液,按需要決定管數(shù)。

                 (3) 4℃,12000 rpm,離心2 min,以回收細菌。

                 (4)倒凈上清液,倒置離心管于濾紙上1min,使殘留的痕量培養(yǎng)液流盡。每管加1ml冰預冷的0.1mol/L CaCl2懸浮細胞,冰浴30 min 。        

                   (5)4℃,12000 rpm,2 min。

                  (6)倒凈上清液,倒置離心管1min,使殘留液流盡。每管加100 ul冰預冷的0.1 mol/L CaCl2重新懸浮細胞(重懸時操作要輕),即成感受態(tài)細胞懸浮液。

                    2.細菌轉(zhuǎn)化:

                 (1)取3只滅菌的Ep管,分別編號1、2、3、分別加入以下各組分:加入10~20ng質(zhì)粒DNA(體積小于10ul),同時做兩個對照組:

                  1號:受體菌對照組:  100ul感受態(tài)細胞懸浮液+2ul無菌ddH2O

                  2號:質(zhì)粒DNA對照組:100ul 0.1mol/L CaCl2+2ul pUC19

                  3號:正常轉(zhuǎn)化組:100ul感受態(tài)細胞懸浮液+2ul pUC19

                (2)輕輕旋轉(zhuǎn)離心管以混勻內(nèi)容物,冰浴30min,促進DNA分子在感受態(tài)細胞表面的吸附。

                       (3)轉(zhuǎn)入42℃水浴2min,通過熱刺激增強CaCL2的作用,使細胞膜產(chǎn)生通道,便于DNA分子的吸附進入,提高轉(zhuǎn)化率。

                (4)迅速轉(zhuǎn)入冰上冷卻2min,修復細胞膜。

                        (5)加600u無抗生素lLB液體培養(yǎng)基,搖勻后于37℃,220 rpm,振蕩60min。使受體菌恢復正常生長狀態(tài),并且表達Ampicillin抗性基因。

                (6)取200ul菌液涂在含Ampicillin的LB平板,將平板置于無菌臺直至液體被吸收,37℃恒溫培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)12-16h后觀察結(jié)果,其余保存于4℃。如果平板上沒有長出菌落,可將之置于37℃恒溫培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng),同時將剩下的500ul菌液離心,倒掉大部分上清,留100ul左右,用移液器吹打重懸,再全部涂于含Ampicillin的LB平板上,置37℃培養(yǎng)。

                 (7)觀察并記錄轉(zhuǎn)化子出現(xiàn)的數(shù)目,計算轉(zhuǎn)化率。

                四、注意事項:

                    1. 實驗中所用的器皿均要滅菌,以防止雜菌和外源DNA的污染。

                    2. 實驗過程中要注意無菌操作,溶液移取、分裝等均應在無菌超凈工作臺上進行。

                    3. 必須設對照組,以檢驗實驗過程中是否有污染。

                    4. 整個實驗過程均需置于冰上。

                   5. 選用對數(shù)生長期細胞,OD600不應高于0.6。
             



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