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            蛋白質(zhì)技術專題:蛋白質(zhì)的提取及粗分離實驗

            2013-12-11  閱讀(1452)

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            標簽: 蛋白質(zhì) 提取 粗分離

            分離純化蛋白質(zhì),首先要從原材料中提取目的蛋白,然后通過粗分離的方法除去大量雜質(zhì),zui后進行精細分離,得到目的蛋白。本實驗以新型基因重組人TNF為例闡明重組蛋白TNF的提取及初步分離。

            實驗方法
            • 硫酸銨鹽析法
            實驗方法原理
            分離純化蛋白質(zhì),首先要從原材料中提取目的蛋白,然后通過粗分離的方法除去大量雜質(zhì),zui后進行精細分離,得到目的蛋白。本實驗以新型基因重組人TNF為例闡明重組蛋白TNF的提取及初步分離。
             
            TNF的提取是將發(fā)酵菌體裂解,在一定的條件和溶液中,使被提取的TNF充分釋放出來,經(jīng)離心收集混合液中提取的TNF成份的過程。含有TNF的提取溶液中,含有大量的雜蛋白,由于蛋白質(zhì)在水溶液中的溶解度主要取決于蛋白質(zhì)分子表面的水分子數(shù)目,即蛋白質(zhì)表面親水基團與水分子形成水化膜的程度和帶電荷的情況,當中性鹽如硫酸銨等加入蛋白質(zhì)溶液時,由于中性鹽對水分子的親和力大于蛋白質(zhì),使蛋白質(zhì)分子周圍的水化膜減弱或消失,蛋白質(zhì)溶解度降低,同時由于中性鹽的加入,蛋白質(zhì)溶液的離子強度發(fā)生了改變,蛋白質(zhì)表面電荷被大量中和,更加導致蛋白質(zhì)溶解度降低,使蛋白質(zhì)分子之間互相聚集而發(fā)生沉淀。不同的蛋白質(zhì)由于其帶電性,親水性等性質(zhì)的不同,會在不同濃度的鹽中形成沉淀。依此原理可對混合蛋白質(zhì)進行粗分離。該實驗中利用硫酸銨鹽析除去大部分雜蛋白從而使TNF得到初步純化。
            實驗材料
            試劑、試劑盒
            儀器、耗材
            實驗步驟
            一、試劑配制
             
            1.  STE(25%蔗糖  10 mmol/L Tris-HCl pH 8.5 1 mmol/L EDTA)
             蔗糖       250 g
            1 mol/L Tris.HCL   10 ml
            0.5 mol/L EDTA     2 ml,加水至1 000 ml
            115℃,20 min高壓滅菌

            2.  1mol/L  MgCl2
            取  MgCl2  203.30 g,加水至1 000 ml
             
            3.  Tris-HCL  pH8.5
            取Tris  121.14 g
            用HCL調(diào)pH至8.5,加水至1 000 ml
            (12 mol/L  HCL約30 ml)
             
            4.  0.5 mol/L EDTA pH8.5
            乙二氨四乙酸二鈉      186.12 g
            NaOH  20 g,加水至1 000 ml
            121℃,20 min高壓滅菌
             
            二、操作步驟
             
            1.  稱取菌體重量,按5~10 ml/g菌體加入STE溶液,攪拌至菌體*懸浮。
             
            2.  按0.5~1 mg/g菌體加入用STE溶液新鮮配制的溶菌酶溶液,用玻璃棒用力攪勻后于4℃環(huán)境中放置20 min。此時菌液呈粘稠狀。
             
            3.  按10 mg/g菌體加入用STE溶液新鮮配制的脫氧膽酸鈉(DOC)溶液,用力攪勻。
             
            4.  加入5~10 ml 1 mol/L MgCl2溶液,攪勻后加入約40 μl Dnase I(25 mg/ml)充分攪拌至菌液變稀。
             
            5.  15 000 rpm,4℃離心30 min。
             
            6.  取離心上清,量取其體積,測定蛋白質(zhì)濃度,倒入置于冰浴的燒杯中,邊攪拌邊緩慢加入固體硫酸銨使其達到50%飽和度。待固體硫酸銨安全溶解后,靜置于0℃環(huán)境中30 min。
             
            7.  離心,15 000 rpm,4℃,30 min。取離心上清,量其體積,測定蛋白濃度。
             
            8.  將離心上清裝入透析袋,4℃攪拌在pH8.5 20 mmol/L Tris-Hcl,1 mmol/L EDTA溶液中透析。
             
            加入硫酸銨不論是固體硫酸銨,還是加入飽和硫酸銨溶液,加入時應邊加入邊攪拌,特別注意① 加入硫酸銨要慢,因為太快會引起蛋白質(zhì)發(fā)生共沉淀,加入固體硫酸銨時事先要將硫酸銨研磨成粉末,加入飽和硫酸銨溶液時要一滴一滴地加入;② 攪拌要慢,攪拌劇烈,蛋白質(zhì)溶液容

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