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            類器官原位活死染色實(shí)驗(yàn)攻略

            閱讀:986      發(fā)布時(shí)間:2024-4-30
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            概述

             

            在類器官的培養(yǎng)過程中,如果我們想了解類器官的增殖及凋亡狀態(tài),可以通過對活細(xì)胞和死細(xì)胞進(jìn)行熒光染色,通過熒光顯微鏡拍照觀察。

             

            Calcein-AM是一種對活細(xì)胞進(jìn)行熒光標(biāo)記的細(xì)胞染色試劑,發(fā)綠色熒光 (Ex=490nm, Em=515nm)。因其在傳統(tǒng)的Calcein(鈣黃綠素)基礎(chǔ)上引入乙酰甲氧基甲酯(AM)基團(tuán),增加了疏水性,使其能夠輕易穿透活細(xì)胞膜。一旦進(jìn)入細(xì)胞后,Calcein-AM(本身不發(fā)熒光)被細(xì)胞內(nèi)的酯酶剪切形成膜非滲透性的極性分子Calcein,從而被滯留在細(xì)胞內(nèi)并發(fā)出強(qiáng)綠色熒光。與其它同類試劑(如BCECF-AM和CFDA)相比,由于Calcein-AM細(xì)胞毒性極低,是很適合用于活細(xì)胞染色的熒光探針,而且不會抑制任何的細(xì)胞功能,如增殖和淋巴球的趨化性。        

             

            由于死細(xì)胞缺乏酯酶,Calcein-AM僅用于對活細(xì)胞的細(xì)胞生存能力測試和短期標(biāo)記。因此,Calcein-AM常常與死細(xì)胞熒光探針如碘化丙啶(PI)等聯(lián)合使用,同時(shí)進(jìn)行活細(xì)胞和死細(xì)胞的熒光雙重染色。碘化丙啶(Propidium iodide, PI)不能穿過活細(xì)胞的細(xì)胞膜,僅能穿過死細(xì)胞膜的無序區(qū)域而到達(dá)細(xì)胞核,并嵌入細(xì)胞的DNA雙螺旋從而產(chǎn)生紅色熒光(Ex=535nm, Em=617nm),因此PI僅對死細(xì)胞染色。由于Calcein和PI-DNA都可被490nm激發(fā),因此可用熒光顯微鏡同時(shí)觀察活細(xì)胞和死細(xì)胞。而用545nm激發(fā),僅可觀察到死細(xì)胞。

             

            原理

             

            本試劑盒的工作原理就在于Calcein-AM和PI的雙重染料,來進(jìn)行活細(xì)胞和死細(xì)胞的雙重染色標(biāo)記,從而進(jìn)行活細(xì)胞和死細(xì)胞水平的分析。根據(jù)我司優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)體系,以24孔板,每孔25uL類器官基質(zhì)膠凝聚物為例,每孔添加500uL染色工作液進(jìn)行染色。

             

            活細(xì)胞/死細(xì)胞雙染試劑盒(abs50056)


            組分

            名稱

            規(guī)格

            保存

            A

            Calcein-AM Solution(2mM)

            50μL

            -20℃避光干燥保存

            B

            PI Solution(1.5mM)

            150μL

            -20℃避光干燥保存

            C

            10×Assay Buffer 

            50mL

            -20℃保存,經(jīng)常使用可放在4℃保存。




             

            實(shí)驗(yàn)步驟

             

            一、工作液的配制:

             

            1、1×Assay Buffer(反應(yīng)緩沖液)的配制 從低溫冰箱內(nèi)取出10×Assay Buffer,根據(jù)單次用量無菌條件取出適量,用去離子水(dH2O)做10倍稀釋以得到1×Assay Buffer。

            2、1×染色工作液的配制

            (1)先將低溫保存的Calcein-AM溶液(2mM)和PI溶液(1.5mM)回到室溫20-30min。 注意:第一次使用可對母液進(jìn)行分裝,以減少反復(fù)凍融次數(shù)。

            (2)取5μL Calcein-AM溶液(2mM)和15μL PI 溶液(1.5mM)加入5mL 1×Assay Buffer,充分混勻。此時(shí)得到Calcein-AM的工作液濃度為2μM,PI的工作液濃度為4.5μM。

            注意:由于不同種類器官的最佳染色條件不同,初次實(shí)驗(yàn)建議做梯度實(shí)驗(yàn),以確定Calcein-AM和PI的最適濃度。梯度篩選的原則為使用min的探針濃度得到較好的熒光結(jié)果??梢允褂靡韵路椒▉韮?yōu)化得到兩種熒光染料的最佳工作濃度。

             

            a. 用0.1%皂素或者0.1-0.5%digoxin孵育類器官1h,或者用70%乙醇孵育類器官1h,從而制備死類器官;

            b. 用0.1-10μM的PI溶液進(jìn)行死類器官染色,以得到僅僅對細(xì)胞核染色,而不會對細(xì)胞質(zhì)染色的最佳工作濃度;

            c. 用0.1-10μM的Calcein-AM進(jìn)行死類器官染色,以得到不會對細(xì)胞質(zhì)染色的最佳工作濃度。然后用此濃度進(jìn)行活細(xì)胞染色,去觀察活細(xì)胞是否能被染色。

             

            二、染色步驟:

             

             以24孔板,每孔25uL類器官基質(zhì)膠凝聚物為例,檢測時(shí)只需棄除類器官培養(yǎng)液,保留孔板內(nèi)25μL類器官基質(zhì)膠凝聚物,加入染色工作液即可。

             

            1、將類器官培養(yǎng)基吸棄,加入PBS清洗2-3遍,以充分去除殘留的酯酶活性,然后棄除PBS;

            2、每孔加入500μL染色工作液,混勻,37℃孵育1h;

            3、熒光顯微鏡下使用490±10nm激發(fā)濾片同時(shí)檢測活細(xì)胞(黃綠色熒光)以及死細(xì)胞(紅色熒光)。另外,使用545nm的發(fā)射濾片僅能觀察到死細(xì)胞。也可以直接在熒光酶標(biāo)儀下使用合適的濾片進(jìn)行檢測。

             

            注意事項(xiàng)

            1、由于Calcein-AM對濕度非常敏感,若是Calcein-AM溶液每次取完需要量后,必須緊緊密封蓋子。建議根據(jù)單次用量,分裝密封保存。

            2、由于Calcein-AM的穩(wěn)定性比較差,此染色工作液必須現(xiàn)配現(xiàn)用,并且在當(dāng)天用完。

            3、碘化丙啶(PI)有一定的致癌性,操作時(shí)一定要注意防護(hù)。若接觸到皮膚,需要立即用自來水清洗。

            4、為了您的安全和健康,請穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。

             

            染色效果圖展示

             

            一、人肝細(xì)胞癌類器官明場圖




            人肝細(xì)胞癌類器官擴(kuò)增過程(由少到多)

             

            二、人肝細(xì)胞癌類器官活死染色視頻


             

            三、人肝細(xì)胞癌類器官活死染色圖


            人肝細(xì)胞癌類器官活細(xì)胞、死細(xì)胞、活死細(xì)胞染色合并圖


            人肝細(xì)胞癌類器官活死細(xì)胞染色合并圖

             

            今天講解就到這了,大家如有實(shí)驗(yàn)問題,歡迎私聊交流哦!

             

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