免疫熒光（IF）是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術(shù)的基礎(chǔ)上建立起來的一項檢測技術(shù)。可用于檢測和識別細胞和組織中蛋白質(zhì)及其他分子的亞細胞分布和遷移。那么你知道免疫熒光實驗的步驟有哪些嗎？讓我們一起來看看吧！

一、細胞準備

對于單層生長的細胞，將細胞接種到預先處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中，待細胞接近長成單層后取出蓋玻片，用PBS洗滌兩次。

對于懸浮生長的細胞，取對數(shù)生長的細胞，用PBS離心洗滌（1000rpm, 5min）兩次，然后用細胞離心甩片機制備細胞片或直接制備細胞涂片。

二、固定

根據(jù)需要選擇適當?shù)墓潭▌﹣砉潭毎?/p>

固定完畢后的細胞可置于含有疊氮納的PBS中，在4℃保存3個月。用PBS洗滌3次，每次洗滌5分鐘。

三、通透

對于使用交聯(lián)劑（如多聚甲醛）固定的細胞，一般需要在加入抗體之前進行通透處理，以確保抗體能夠到達抗原部位。選擇通透劑時應充分考慮抗原蛋白的性質(zhì)。通透時間一般在5-15分鐘。通透后用PBS洗滌3次，每次洗滌5分鐘。

四、封閉

使用封閉液對細胞進行封閉處理，時間一般為30分鐘。

五、一抗結(jié)合

在室溫孵育1小時或者在4℃過夜。用PBST洗滌3次，每次沖洗5分鐘。

六、二抗結(jié)合

對于間接免疫熒光，需要使用二抗。在室溫避光孵育1小時。用PBST洗滌3次，每次沖洗5分鐘，然后再用蒸餾水洗滌一次。

七、封片及檢測

滴加一滴封片劑，然后封片，最后使用熒光顯微鏡進行檢查。

更多有關(guān)免疫熒光實驗的步驟，請聯(lián)系北京百奧創(chuàng)新科技有限公司：