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            快速多片段DNA無縫克隆預(yù)混液工作流程&使用原理

            時間:2023/9/18閱讀:290
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            基于重組原理的無縫克隆技術(shù)是一種新一代的克隆方法,不需要繁瑣的酶消化、連接步驟或末端拋光。它允許通過將DNA片段與線性化載體末端的15~25nt同源序列重組,將插入片段克隆到線性化載體的任何位置。該載體的自連接背景極低,是一種簡單、快速、高效的DNA定向克隆技術(shù)。FlyCut™ DNA組裝Mix-Plus無縫克隆試劑盒能夠在單個反應(yīng)中重組單個或多個DNA片段。它可以在5分鐘內(nèi)實現(xiàn)單片段重組,陽性率超過95%。添加到混合物中的輔助因子有效地提高了克隆陽性率,優(yōu)化的反應(yīng)系統(tǒng)可以在一定程度上耐受未純化的PCR產(chǎn)物中的雜質(zhì)。無血清克隆試劑盒的升級版具有更高的陽性率和更好的兼容性。

             

            艾美捷快速多片段DNA無縫克隆預(yù)混液

            Cat #: C-BSM1202

            Size: 50 rxns

            Storage: -20°C

             

            快速多片段DNA無縫克隆預(yù)混液

            組件   規(guī)格

            FlyCutDNA組裝混合物+250μl

            pUC19對照質(zhì)粒,線性化(安培,40納克/μl50μl

            500 bp對照片段(20納克/μl50μl

             

            快速多片段DNA無縫克隆預(yù)混液使用說明:

            1.工作流程概述

            31.png

            2.線性化克隆載體的制備

            選擇合適的克隆位點(diǎn)并將載體線性化。載體的線性化可以通過酶切或反向PCR擴(kuò)增來實現(xiàn)。

            ① 酶消化制劑

            一些限制性內(nèi)切酶不能有效地消化超螺旋DNA,這可能導(dǎo)致不同數(shù)量的載體DNA未消化,導(dǎo)致陽性率降低。建議使用FlyCutTM快速限制酶進(jìn)行消化(單次或雙次消化),以確保載體的完-全線性化并減少轉(zhuǎn)化背景(從未消化的載體中獲得假陽性克?。?/span>

            1:通過酶消化制備的線性化載體不需要去磷酸化。建議進(jìn)行雙重消化。

            2:消化后,建議滅活限制性內(nèi)切酶或純化所需產(chǎn)物,用于組合反應(yīng)。

            ② 反向PCR擴(kuò)增制備

            為了盡量減少擴(kuò)增突變的引入,建議使用高保真度PCR混合物進(jìn)行擴(kuò)增。建議使用預(yù)線性化的質(zhì)粒作為模板,以減少殘留的環(huán)狀質(zhì)粒模板對克隆陽性率的影響。

            1:如果PCR產(chǎn)物沒有顯示出特定的條帶,建議使用模板消除劑消化質(zhì)粒模板,用于重組反應(yīng)。否則,建議對PCR產(chǎn)物進(jìn)行純化。

            2:對于多片段克隆,建議在使用前對PCR產(chǎn)物進(jìn)行純化。

            3.插入片段的PCR引物的設(shè)計

            PCR引物的5'端必須包含與相鄰片段(插入片段或載體)端同源的15~25nt(推薦18nt)序列。如果矢量有粘性末端,并且3'末端突出,則底漆設(shè)計必須包括突出部分。如果5’端突出,底漆設(shè)計可以包括或排除突出部分。插入片段的正向擴(kuò)增引物:

            5'-上游載體同源序列+限制性位點(diǎn)(可選)+基因特異性正向擴(kuò)增

            序列-3'

            插入片段的反向擴(kuò)增引物:

            3'-基因特異性反向擴(kuò)增序列+限制性位點(diǎn)(可選)+下游同源載體

            序列-5'

            1:建議選擇沒有重復(fù)序列、GC含量一致的區(qū)域進(jìn)行克隆。當(dāng)載體克隆位點(diǎn)上游和下游的25nt區(qū)域中的GC含量在40%60%之間時,實現(xiàn)了較高的重組效率。

            4.插入片段的PCR擴(kuò)增

            建議使用高保真度PCR混合物,以盡量減少擴(kuò)增突變的引入。建議使用純化的PCR產(chǎn)物進(jìn)行無縫克隆反應(yīng)。如果通過瓊脂糖凝膠電泳將PCR產(chǎn)物鑒定為特異性擴(kuò)增產(chǎn)物,則可以直接使用,但添加的體積不應(yīng)超過總反應(yīng)體積的20%。

            5.重組反應(yīng)

            6.重組產(chǎn)品的轉(zhuǎn)化

            5-10μl反應(yīng)混合物,加入100μl感受態(tài)細(xì)胞中。輕輕移液管并緩慢混合,然后放在冰上30分鐘。在42°C下加熱休克45-60秒,然后在冰上孵育5分鐘。加入500μl SOCLB培養(yǎng)基,在37℃下振蕩40-60分鐘(200 rpm)。將細(xì)菌溶液均勻地涂抹在含有相應(yīng)抗生素的瓊脂板上,并在37°C下孵育過夜。

            7.陽性克隆檢測:

            取單個菌落與10μl ddH20混合。在95°C下孵育10分鐘進(jìn)行裂解后,取1μl裂解液作為平板進(jìn)行菌落PCR鑒定。或者,將單個菌落接種在含有抗生素的培養(yǎng)基中并培養(yǎng)過夜,然后提取質(zhì)粒進(jìn)行酶消化鑒定。對于陽性克隆檢測中的陽性對照,使用通用引物M13FM13R進(jìn)行克隆PCR,使用HindllEcoRI進(jìn)行酶消化鑒定。

            1:建議在菌落PCR中至少使用一種通用引物,以避免假陽性結(jié)果。

            2:如有必要,可對陽性結(jié)果進(jìn)行進(jìn)一步測序鑒定。


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