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            荷花花粉檢測

            閱讀:280        發(fā)布時間:2022-3-24

                蓮別稱荷花,是蓮科(Nelumbonaceae)蓮屬(Nelumbo)的多年生挺水植物,是最古老的雙子葉植物之一,目前僅存有美洲蓮(Nelumbolutea)和亞洲蓮(N.nucifera)2個種。荷花集觀賞、食用、藥用等功能于一體,具有重要的文化價值、經(jīng)濟(jì)價值、生態(tài)價值[1-2]。

                花粉是植物體上起生殖作用的雄配子體[3],其活力直接影響到植物受精和結(jié)實過程,較高的花粉活力可以提高植物的結(jié)實率和育種成效。荷花花粉含有豐富的類黃酮,目前針對荷花藥用價值的研究較多[4-5],而對其活力的研究較少[6]。目前已有的2000多個荷花品種主要由中國和日本培育而成[7],育種方法主要是自然雜交和人工雜交,少部分采用物理或化學(xué)誘變方法[8-10],然而在荷花雜交過程中常出現(xiàn)不結(jié)實或結(jié)實率低的問題。因此,了解花粉活力情況對于荷花雜交育種過程至關(guān)重要,如不同種類的荷花花粉活力是否存在差異及差異多大,如何更有效地檢測荷花的花粉活力,如何更有效地儲藏花粉使其活力保存較長時間等問題目前尚不清楚。

                離體培養(yǎng)法和染色法是測定植物花粉活力的常用方法,已經(jīng)在百合[11]、牡丹[12]、巴旦木[13]、菊花[14]、君子蘭[15]等植物中得到了廣泛應(yīng)用。本研究以不同資源荷花的花粉為試驗材料,分別采用離體培養(yǎng)法、碘-碘化鉀(I2-KI)染色法、2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)染色法進(jìn)行活力檢測,以離體培養(yǎng)法作為參照,比較2種染色方法的測定結(jié)果,從而對不同資源荷花的花粉活力進(jìn)行比較分析。

                在對荷花進(jìn)行人工雜交前,先對花粉活力進(jìn)行準(zhǔn)確有效的檢測,選出花粉活力強(qiáng)的品種作為父本,進(jìn)而選擇合適的雜交母本,是保證雜交育種工作順利開展和提高效率的重要條件。本研究期望得出有效、快速地檢測荷花花粉活力的方法,從而篩選出花粉活力較高的荷花品種,為荷花新品種的高效培育奠定基礎(chǔ)。

                1材料與方法

                1.1試驗材料

                表1中的試驗材料為取自上海辰山植物園國家荷花資源圃的11份不同資源的荷花,包括美洲蓮、亞洲蓮及亞美雜交蓮,均為單瓣型(圖1),因考慮到單瓣型荷花雄蕊發(fā)育正常,花粉活力通常更高。試驗材料采集時選擇天氣晴朗的08:00左右,選取開花第2天的荷花,荷花花蕾在開花前用種子袋套上,避免因蜜蜂采蜜導(dǎo)致授粉雜交。試驗于2020年7—9月在上海辰山植物園中國科學(xué)院上海辰山植物科學(xué)研究中心的觀賞植物資源及創(chuàng)新利用研究組247實驗室內(nèi)完成。

                1.2試驗方法

                1.2.1花粉的收集用一次性唇刷將花粉從花藥上輕刷下來,放在培養(yǎng)皿中的硫酸紙上,蓋上培養(yǎng)皿備用。

                1.2.2培養(yǎng)基的選擇影響花粉萌發(fā)的主要因素有蔗糖、硼酸等[16]。聚乙二醇(PEG)可以促進(jìn)種子萌發(fā)[17],也可以使花粉緩慢水合,從而較長時間地維持花粉膨壓,對花粉萌發(fā)也有一定的促進(jìn)作用[18-20]。由前期的試驗結(jié)果可知,荷花在固體培養(yǎng)基上的萌發(fā)率較低,結(jié)合孫春青等的方法[21],最終選用液體培養(yǎng)基。

                為了得到適用于大多數(shù)荷花花粉萌發(fā)的培養(yǎng)基,設(shè)置PEG-4000(含量分別為0、10%、15%)、蔗糖(含量分別為0、5%、10%)、硼酸(含量分別為0、0.01%、0.02%)3個因素的3個水平,共設(shè)計15種組成不一的培養(yǎng)基(表2),并選擇3個荷花品種的花粉做培養(yǎng)基篩選試驗,分別為粉霸王、易建蓮、巨姚。分別將3個荷花品種的花粉撒于15種培養(yǎng)基上,在培養(yǎng)箱中于30℃培養(yǎng)4h后,使用奧林巴斯BX43正置顯微鏡,在放大10倍的條件下觀察花粉的萌發(fā)情況,統(tǒng)計萌發(fā)率。在離體培養(yǎng)法中,當(dāng)花粉管的長度大于花粉粒的直徑時視為萌發(fā)[22]。

                1.2.3離體培養(yǎng)法配制培養(yǎng)基,將培養(yǎng)基置于干凈的凹面載玻片上,取花粉均勻撒在培養(yǎng)基上,然后將其放入內(nèi)置濕潤濾紙的培養(yǎng)皿中,在培養(yǎng)箱中于30℃培養(yǎng)4h后,鏡檢觀察花粉的萌發(fā)情況,統(tǒng)計萌發(fā)率。每個處理設(shè)置3個重復(fù),每個重復(fù)觀察3個視野。

                1.2.4I2-KI染色法配制I2-KI溶液(稱量0.2gKI溶于8mL蒸餾水中,充分溶解后,加入0.1gI2定容至30mL,振蕩使其充分溶解)于棕色滴瓶中,避光備用。取適量花粉于PCR管中,將PCR管用錫箔紙包裹避光,再向管中加入200μLI2-KI溶液,輕輕振蕩混勻,然后在黑暗條件下染色5min。滴2~3滴染色液于載玻片上,鏡檢觀察,被染成藍(lán)色的花粉視為有活力,未被染色的花粉則視為無活力。上述每個處理設(shè)置3個重復(fù),每個重復(fù)觀察3個視野。

                1.2.5TTC染色法配制0.5%TTC溶液(稱量0.05gTTC溶于10mL磷酸緩沖液中)于棕色滴瓶中,避光備用,溶液需現(xiàn)配現(xiàn)用。取適量花粉于PCR管中,將PCR管用錫箔紙包裹避光,再向管中加入200μLTTC溶液,輕輕振蕩混勻,然后放入37℃培養(yǎng)箱中黑暗染色15min。滴2~3滴染色液于載玻片上,鏡檢觀察,被染成紅色的花粉是有活力的,未被染色的花粉是無活力的。上述每個處理設(shè)置3個重復(fù),每個重復(fù)觀察3個視野。


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