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            深圳市安培生物科技有限公司
            中級(jí)會(huì)員 | 第5年

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            瓊脂糖凝膠電泳的實(shí)驗(yàn)步驟及常見問題分析

            時(shí)間:2024/5/7閱讀:1210
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            實(shí)驗(yàn)原理:

            瓊脂糖是一種天然聚合長(zhǎng)鏈狀分子,可以形成具有剛性的濾孔,凝膠孔徑的大小決定于瓊脂糖的濃度。


            DNA分子在堿性緩沖液中帶負(fù)電荷,在外加電場(chǎng)作用下向正極泳動(dòng)。


            DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動(dòng)時(shí),有電荷效應(yīng)與分子篩效應(yīng)。不同DNA的分子量大小及構(gòu)型不同,電泳時(shí)的泳動(dòng)率就不同,從而分出不同的區(qū)帶。


            實(shí)驗(yàn)步驟:

            1. 配膠 首先根據(jù)DNA片段大小確定瓊脂糖凝膠濃度,稱取相應(yīng)質(zhì)量的瓊脂糖粉末于TAE/TBE緩沖液中溶解,微波加熱1min左右取出(時(shí)間根據(jù)體積改變),加入Gelred染料,搖晃均勻后倒入模具。

            注:緩沖液為三乙酰-乙二胺四乙酸(EDTA)(TAE)或三硼酸-EDTA(TBE),三酸溶液是微堿性條件下的有效緩沖液,可保持DNA去質(zhì)子化并溶于水。EDTA是一種螯合劑,能使可能損害被分析的DNA的核酸酶失活。

            表1 DNA片段大小與瓊脂糖凝膠濃度的關(guān)系

            瓊脂糖凝膠電泳的實(shí)驗(yàn)步驟及常見問題分析

            2、凝膠澆注

            選擇所需尺寸的凝膠澆注模具和梳齒。輕柔地將加了染料的瓊脂糖凝膠溶液倒入模具中,觀察有無(wú)氣泡產(chǎn)生,在膠未全部凝固的時(shí)候戳破,否則會(huì)影響最終結(jié)果。注:速度不可太快,否則容易出現(xiàn)氣泡。

            3、將樣品與DNA loading buffer混合

            將樣品與含溴酚藍(lán)的loading buffer混合,loading buffer可以幫助我們觀察樣品的位置。

            4、凝膠裝入

            待膠變硬,直到呈乳白色且不透明(約20-30 min),小心地垂直拔出梳齒,將膠塊放入電泳槽中,確??孜挥谪?fù)電極(一般為黑色),將運(yùn)行緩沖液(TAE或TBE)注入槽中,使凝膠被淹沒1-2 mm。用移液器向泳道中加樣,不要超過泳道載量,否則樣品會(huì)溢出。

            5、凝膠運(yùn)行

            確保電極沒有插反,否則樣品會(huì)跑到緩沖液中。設(shè)定凝膠運(yùn)行的時(shí)間和電壓,調(diào)節(jié)電壓至4-5V/cm,DNA從負(fù)極移到正極,電泳時(shí)間30-60 min,具體根據(jù)凝膠比例和片段大小進(jìn)行調(diào)整(一般120V,35 min即可)。電泳結(jié)束后,拔掉電源。

            常見問題分析:

            1.加樣孔有熒光

            (1)提DNA時(shí)有蛋白質(zhì)殘留。

            (2)基因組DNA,如果使用普通的瓊脂糖電泳,往往不能電泳出孔,滯留在加樣孔中產(chǎn)生熒光。

            2.條帶扭曲呈波浪狀

            (1)配制凝膠的緩沖液和電泳緩沖液不是同時(shí)配制的。

            (2)電泳時(shí)電壓過高??梢栽陔娪厩?5分鐘用較低電壓(3 V/cm),等條帶出孔后,再調(diào)電壓。

            (3)慢慢加樣,等樣品自然沉降后再加電壓。

            3.條帶彌散

            (1)DNA發(fā)生降解。

            (2)電泳緩沖液陳舊(根據(jù)DNA Maker對(duì)照,觀察是否為電泳體系的問題)。

            (3)PCR過程產(chǎn)生非特異性的擴(kuò)增 (使用特異性較高的引物)。

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