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            深圳市安培生物科技有限公司
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            慢病毒制備和導(dǎo)入細(xì)胞的操作步驟及注意事項(xiàng)

            時(shí)間:2024/6/6閱讀:1016
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            前置知識

            通過病毒介導(dǎo)將核酸導(dǎo)入哺乳動物細(xì)胞是一種常用的實(shí)驗(yàn)技術(shù),被廣泛用于基因傳遞、基因表達(dá)和功能研究等領(lǐng)域。這個(gè)實(shí)驗(yàn)通常分為以下6個(gè)部分:


            1.選擇適當(dāng)?shù)牟《据d體:常用的病毒載體包括腺病毒(Adenovirus)、腺相關(guān)病毒(Adeno-associated virus,AAV)和逆轉(zhuǎn)錄病毒(Retrovirus)。


            2. 構(gòu)建表達(dá)載體:將目標(biāo)核酸(例如基因、RNA等)插入到病毒載體的適當(dāng)位點(diǎn)上,構(gòu)建表達(dá)載體。這通常涉及將目標(biāo)核酸序列克隆到適當(dāng)?shù)谋磉_(dá)載體質(zhì)粒中,并進(jìn)行驗(yàn)證和測序。


            3. 病毒包裝和擴(kuò)增:將構(gòu)建好的表達(dá)載體轉(zhuǎn)染到特定的包裝細(xì)胞中,這些細(xì)胞能夠產(chǎn)生具有完整病毒基因組的病毒顆粒。病毒顆??梢酝ㄟ^細(xì)胞培養(yǎng)和病毒擴(kuò)增過程進(jìn)行大規(guī)模生產(chǎn)。


            4.細(xì)胞轉(zhuǎn)染:將目標(biāo)哺乳動物細(xì)胞培養(yǎng)在培養(yǎng)皿或培養(yǎng)板中,然后將病毒顆粒加入培養(yǎng)基中與細(xì)胞進(jìn)行共培養(yǎng)。病毒顆粒會與細(xì)胞表面的受體結(jié)合,并進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部。


            5.核酸導(dǎo)入和表達(dá):一旦病毒進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部,它會釋放出核酸負(fù)鏈,該負(fù)鏈會被細(xì)胞核內(nèi)的轉(zhuǎn)錄和翻譯機(jī)制利用。目標(biāo)核酸的表達(dá)產(chǎn)物(例如蛋白質(zhì))會在細(xì)胞內(nèi)合成,并根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要發(fā)揮其功能。


            6.實(shí)驗(yàn)分析:根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康?,可以對?xì)胞和表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行進(jìn)一步的分析。這可能包括檢測蛋白質(zhì)表達(dá)水平、功能研究、細(xì)胞行為觀察等。


            操作步驟

            A 慢病毒制備:

            1、提前一周復(fù)蘇293T細(xì)胞,使用10% FBS-DMEM培養(yǎng)基傳代3次以上。


            轉(zhuǎn)染前一天將生長狀態(tài)良好的293T細(xì)胞用0.25%胰酶消化,得到細(xì)胞懸液,計(jì)數(shù),然后進(jìn)行慢病毒質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,稀釋到10個(gè)/mL;

            將293T接種到6孔板(每孔接種2 mL),使其密度為40%。

            待其生長到孔板面積80-90%進(jìn)行轉(zhuǎn)染。

            2、通過質(zhì)粒大提獲得無內(nèi)毒素質(zhì)粒。

            3、在1.5mLEP管中分別加入150μL DMEM培養(yǎng)基、15μL lipofectamine 2000。

            4、在1.5 mL EP 管中分別加入700μL DMEM培養(yǎng)基、7μg目的DNA、5.25μg的psPAX2、1.75μg的pCMV-VSVG(使三條質(zhì)粒質(zhì)量比為 4:3:1)。

            5、將等體積的質(zhì)粒混合物加入到轉(zhuǎn)染試劑混合物中,室溫靜置5min。

            6、將隔夜培養(yǎng)的6孔板中培養(yǎng)基小心吸出,替換為新鮮DMEM(血清)細(xì)胞培養(yǎng)基。每個(gè)孔中加入300 μL的DNA-lipo 2000復(fù)合物。

            7、分別在轉(zhuǎn)染后24h、48h,收集六孔板中病毒上清液,經(jīng)0.45μm的濾膜過濾或離心去除細(xì)胞碎片(短期內(nèi)可放于4℃保存,長期保存于-80℃冰箱,勿反復(fù)凍融)。

            B 慢病毒感染:

            1、提前一周復(fù)蘇靶細(xì)胞,傳代三次以上保證細(xì)胞生長狀態(tài)良好。病毒感染前一天將靶細(xì)胞傳代到6孔板,使細(xì)胞生長密度為約20%。

            2、待細(xì)胞生長至孔板面積50-60%時(shí),加入2ml病毒液,加入polybrene,并補(bǔ)加0.5ml(血清)細(xì)胞培養(yǎng)基,恒溫培養(yǎng)24h。

            3、用(血清)細(xì)胞培養(yǎng)基更換病毒液,恒溫培養(yǎng)24h。

            4、加入適量的抗生素篩選,每次換液時(shí)補(bǔ)加抗生素,至靶細(xì)胞細(xì)胞無明顯死亡。

            注意事項(xiàng):

            1.選擇合適的載體和元件:根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要選擇適當(dāng)?shù)馁|(zhì)粒載體和啟動子,例如CMV啟動子、SV40啟動子等。

            2. 細(xì)胞狀態(tài)和轉(zhuǎn)染密度:細(xì)胞狀態(tài)好,且處于指數(shù)生長階段。靶細(xì)胞密度不宜過高或過低,建議將細(xì)胞密度控制在指數(shù)期的70-80%;

            3. 選擇合適轉(zhuǎn)染試劑、比例和轉(zhuǎn)染時(shí)間:選擇適當(dāng)?shù)霓D(zhuǎn)染試劑,不同類型的細(xì)胞和外源DNA可能需要使用不同的試劑進(jìn)行轉(zhuǎn)染;

            同時(shí),還需要對慢病毒質(zhì)粒、DNA和轉(zhuǎn)染試劑的比例、轉(zhuǎn)染時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化??稍诟腥景屑?xì)胞時(shí)加入適量的聚凝胺提高轉(zhuǎn)染效率。

            4.抗生素濃度:可在轉(zhuǎn)染前做MTT實(shí)驗(yàn)探究其工作濃度,選取合適的篩選濃度使轉(zhuǎn)染的細(xì)胞能夠存活并形成穩(wěn)定的細(xì)胞系。

            5.篩選時(shí)間:在進(jìn)行穩(wěn)定轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)時(shí),需要進(jìn)行足夠長的篩選時(shí)間以檢測出穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的細(xì)胞系,轉(zhuǎn)染后可通過WB,流式細(xì)胞術(shù),Dot blot等方法驗(yàn)證。


            6.對照組設(shè)置:設(shè)置陽性和陰性對照以評估轉(zhuǎn)染效果和篩選是否成功。


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