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            行業(yè)產品

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            [供應]葉綠素熒光測量儀
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            • 葉綠素熒光測量儀
            貨物所在地:
            北京北京市
            產地:
            北京
            更新時間:
            2024-06-28 21:00:18
            有效期:
            2024年6月28日 -- 2024年12月28日
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            (聯(lián)系我們,請說明是在 化工儀器網 上看到的信息,謝謝?。?/p>

            產品簡介

            FL6000雙調制葉綠素熒光測量儀是FL3500雙調制葉綠素熒光儀的新升級版,專門用于對藍綠藻或綠藻等微藻,葉綠體或類囊體懸浮物進行光合作用深入機理研究的強大科研工具。

            詳細介紹

            FL6000雙調制葉綠素熒光測量儀

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            FL6000雙調制葉綠素熒光測量儀FL3500雙調制葉綠素熒光儀的新升級版,專門用于對藍綠藻或綠藻等微藻,葉綠體或類囊體懸浮物進行光合作用深入機理研究的強大科研工具。儀器具備雙通道測量控制,可控制測量樣品的溫度,并配備單翻轉光(STF),內置多種可用戶自行修改的測量程序,可進行目前國際上對于葉綠素熒光的各種深入機理研究。其核心結構是包含了一個懸浮液標準樣品杯的光學測量頭,內置3LED光源和1500 kHz/16 AD 轉換的PIN二極管信號檢測器。AD轉換的增益和積分時間可以通過軟件控制。檢測器測量葉綠素熒光信號的時間分辨率可高達4 µs(快速版為1µs)。

            應用領域:

            · 植物光合特性和代謝紊亂篩選

            · 生物和非生物脅迫的檢測

            · 植物抗脅迫能力或者易感性研究

            · 代謝混亂研究

            · 光合系統(tǒng)工作機理研究

            · 受脅迫植物光合生理應對策略研究


            典型樣品:

            · 藍藻(藍細菌)

            · 綠藻

            · 葉綠體懸浮物

            · 類囊體懸浮物

            · 植物碎片

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            功能特點:

            · 內置葉綠素熒光誘導測量、PAM(脈沖調制)測量、OJIP快速熒光動力學測量、QA–再氧化動力學、S狀態(tài)轉換、葉綠素熒光淬滅等測量程序,是功能全面的葉綠素熒光儀

            · 雙調制技術,可雙色調制測量光,具備調制光化學光和持續(xù)光化學光,可進行STF(單周轉光閃)、TTF(雙周轉光閃)和MTF(多周轉光閃)及定制FRR技術(Fast Repetition Rate)測量

            · 標準版時間分辨率達4µs,快速版更高達1µs,是目前時間分辨率高的葉綠素熒光儀

            · 控制單元為雙通道,可連接溫度傳感器用于溫度控制、連接氧氣測量單元用于希爾反應測量等

            · 具備高靈敏度,低檢測極限為1μg Chla/L

            · 測量光、光化光、飽和單反轉光光源顏色、強度均可定制

            · 主機配備彩色觸摸顯示屏,可實時查看熒光曲線圖


            技術參數:

            · 實驗程序:葉綠素熒光誘導測量;PAM(脈沖調制)測量;OJIP快速熒光動力學測量;QA–再氧化動力學;S狀態(tài)轉換;快速葉綠素熒光誘導

            · 熒光參數:

            ú PAM熒光淬滅動力學測量:F0Fm,FvF0,Fm,Fv,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm,Rfd,qN,qPETR50多項葉綠素熒光參數與曲線;

            ú OJIP快速熒光動力學測量:OJIP曲線與F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、ViFm / F0、Fv / F0Fv / Fm、M0、AreaFix Area、SM、SSN、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0Phi_PavABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC20多項相關參數;

            ú QA–再氧化動力學(QA- reoxidation kinetics):測量QA–再氧化動力學曲線,用于擬合QA–再氧化過程中快相(Fast phase)、中間相(Middle phase)和慢相(Slow phase)各自的振幅(A1,A2,A3)和時間常數(T1T2,T3

            ú S狀態(tài)轉換(S-state test):S-state test熒光衰減曲線,用于擬合計算無活性光系統(tǒng)II PSIIX)反應中心數量

            ú 提供用戶自定義protocol功能,可實現PSII天線異質性PSIIαPSIIβ分析、PSII有效天線截面積(s PSII)等參數的測量

            QA–再氧化動力學曲線和S-state test熒光衰減曲線(Li,2010

             

            · 時間分辨率(采樣頻率):高靈敏度檢測器,標準版時間分辨率為4µs,快速版為1µs

            · 低檢測極限:1μg Chla/L

            · 控制單元:配備彩色觸摸顯示屏,可實時查看熒光曲線圖

            · Superhead測量室:

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            測量光閃:617nm紅橙光和455nm藍光,光閃時間25µs

            單周轉飽和光閃:標準光源為630nm紅光,可選配455nm藍光,大光強80000 µmol(photons)/m2.s,光閃時間2050µs 

            持續(xù)光化學光:標準光源為630nm紅光,可選配455nm藍光,任選其一,大光強3000 µmol(photons)/m2.s

            樣品試管:底面積10×10mm,容積4ml

            AD轉換器:500 kHz/16bit

            · 定制superhead測量室(選配):可分別定制測量光、飽和光閃和光化學光顏色(藍色、青色、琥珀色等)以及檢測波段(ChlA,ChlB

            · 遠紅外光源(選配):用于激發(fā)光系統(tǒng)I,波長735nm

            · 氧氣測量模塊(選配):測量藻類的氧氣釋放

            · 溫度控制(選配):TR 2000溫度調節(jié)器,控溫范圍070℃,精確度0.1

            · 電磁攪拌(選配)密封不銹鋼外殼,IP64防護等級,手動轉扭調速100-1000rpm,8mm×3mm標準磁力棒

            · 通訊接口:USB

            · FluorWin軟件:定義或創(chuàng)建實驗方案、光源控制設置、數據輸出、分析處理和圖表顯示

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            典型應用:

            1. 中科院水生生物所王強研究員使用FL3500葉綠素熒光儀(FL6000之前型號)和TL植物熱釋光系統(tǒng)證明亞硝酸鹽脅迫首先影響Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受體側(Zhan X, et al, 2017)。這種光合作用深入機理的研究經常需要這兩種儀器來配合完成。

            2.中科院新疆生態(tài)與地理研究所潘響亮研究員及其課題組使用FL3500葉綠素熒光儀(FL6000之前型號)深入開展了環(huán)境中重金屬、鹽分、有毒化合物、除草劑、殺蟲劑、抗生素等各種有害物質對藻類的毒理研究。通過FL3500的高分辨率OJIP快速熒光動力學測量、QA–再氧化動力學、S狀態(tài)轉換等葉綠素熒光測量程序,全面揭示了不同濃度與處理時間對藻類光合系統(tǒng)造成損傷的毒理機制及其生態(tài)影響。目前,潘響亮課題組已經使用FL3500FL6000之前型號)在國際SCI期刊與國內核心期刊上發(fā)表了二十余篇高水平文章。

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            1. 不同濃度六價鉻處理后的藍藻快速熒光OJIP曲線

            2. 不同濃度六價鉻處理后的藍藻S狀態(tài)轉換曲線

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            3. 不同濃度六價鉻處理后的藍藻QA–再氧化動力學曲線

            產地:捷克

            參考文獻:

            1. Manaa A, et al. 2019. Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany 162: 103-114

            2. Yu Z, et al. 2019. Sensitivity of Chlamydomonas reinhardtii to cadmium stress is associated with phototaxis. Environmental Science: Processes & Impacts 21: 1011-1020

            3. Liang Y, et al. 2019. Molecular mechanisms of temperature acclimation and adaptation in marine diatoms. The ISME journal, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

            4. Orfanidis S, et al. 2019. Solving Nuisance Cyanobacteria Eutrophication Through Biotechnology. Applied Sciences 9(12): 2566

            5. Sicora C I, et al. 2019. Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research 139(1–3): 461–473

            6. Smythers A L, et al. 2019. Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere 219: 704-712

            7. Albanese P, et al. 2018. Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a nonmodel organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal 96(4): 786-800

            8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

            9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

            10. Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209.

            11. Bonisteel E M, et al. 2018. Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.

            12. Fang X, et al. 2018. Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.

            13. Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493




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