目錄:北京蘭博利德商貿(mào)有限公司>>蛋白研究>>蛋白純化>> N30210-5mlNi NTA Beads 6FF(鎳填料)
| 供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 應用領(lǐng)域 | 食品/農(nóng)產(chǎn)品,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)林牧漁,制藥/生物制藥 |
|---|
Ni NTA Beads 6FF
產(chǎn)品貨號：N30210
儲存條件：2-8℃
產(chǎn)品簡介
LABLEAD的Ni親和層析介質(zhì)屬于一類金屬螯合介質(zhì)，以高流速瓊脂糖為基質(zhì)，以次氮基三乙酸(NTA)或亞氨基二乙酸(IDA)為配基，并鰲合金屬離子Ni2+而形成的一種親和層析介質(zhì)。該親和介質(zhì)不僅具有吸附容量大、選擇性好、分辨率高、超低限度的Ni產(chǎn)泄露、易于再生、成本低等優(yōu)點，還有利于保持產(chǎn)品的生物活性和提高產(chǎn)品的收率，從而廣泛用于生物制藥和生物工程下游蛋白質(zhì)、核酸及多肽的分離純化，尤其是zu氨酸標記蛋白質(zhì)的高效制備。
Ni NTA Beads 6FF產(chǎn)品特點：
可以耐受一定濃度的還原劑、變性劑或耦合劑等苛刻條件，適用性更廣，配體更穩(wěn)定，選擇性更高；
可耐受最高0.3MPa的壓力，更穩(wěn)定，可在相對較高的流速下，實現(xiàn)對目的蛋白的純化。
產(chǎn)品性能
性能 | |
基質(zhì) | 6%高度交聯(lián)瓊脂糖 |
配體 | 次氮基三乙酸(NTA) |
每毫升載量 | >40mgHis標簽蛋 |
微球粒徑 | 45-165 pm |
最大壓力 | 0.3 MPa， 3 bar |
推薦流速 | 150~600cm/h |
pH穩(wěn)定范圍 | 3-12（工作），2-14（清洗） |
化學穩(wěn)定性 | 40℃放置一周： 0.01M Hcl，0.1M NaOH；12h：1M NaOH，70%乙酸；1h：2%SD 30min：30%異丙醇SDS 30min：30%異丙醇 |
儲存溫度 | 2-8℃ |
操作說明
Ni NTA Beads 6FF可以在實驗室被填裝到HiQumnR中壓層析柱中，以擴大產(chǎn)量。將填料填裝到層析柱中，根據(jù)樣本量和填料載量選擇合適的層析柱和柱高。
1.1緩沖液準備
所用緩沖液需采用高純水配制，使用前建議用0.45um濾膜過濾。
平衡緩沖液：20 mM Tris-HCI 500mM NaCl， pH=7.4
洗滌緩沖液：20 mM Tris-HCI 500mM NaCl，10 mM咪唑，pH=7.4
洗脫緩沖液：20 mM Tris-HCl 500mM NaCl，500 mM咪唑，pH=7.4
1.2樣品準備
為了避免堵塞層析柱，樣品應經(jīng)離心或微濾處理。進料量根據(jù)介質(zhì)的載量和料液中目標蛋白的含量計算。
1.3 樣品純化
1)平衡：用5~10CV的平衡緩沖液平衡層析柱，至流出液電導和pH不變(與平衡液一致)。對于結(jié)合力較強的帶zu氨酸標記的蛋白質(zhì)，平衡緩沖液中可加入低濃度(20~40 mM)的咪唑。
2)進樣：樣品緩沖液應盡可能與平衡液一致。固體樣品可用平衡液溶解配制；低濃度樣品溶液可用平衡液透析，高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。
3)淋洗：上樣完畢后繼續(xù)用平衡緩沖液淋洗至基線。
4)洗脫：
洗脫一般有兩種方式，
一是采用競爭試劑，例如咪唑(0~0.5M)、zu氨酸(0~0.05M)、氯化銨(0~2M)等將蛋白質(zhì)從柱子上置換下來；
二是減小pH值，洗脫目標蛋白，大多數(shù)蛋白質(zhì)在pH4~6的范圍內(nèi)可被洗下來。用競爭試劑咪唑或減小pH值的方法洗脫蛋白質(zhì)，金屬離子仍結(jié)合在柱子上；若用競爭試劑zu氨酸或氯化銨洗脫蛋白質(zhì)，會將金屬離子和蛋白質(zhì)的復合物一起洗下來。
注：
①為了減少雜蛋白在層析柱上的吸附，可在確保目標蛋白吸附的情況下適當增加樣品緩沖液中的咪唑。對于包涵體蛋白，相應的可在平衡、上樣和洗脫的緩沖液中加入8MUrea或6MGua-HCl
②洗脫緩沖液中必須加入0.15~1.0M NaCl，以消除離子交換作用。梯度洗脫最好在起始平衡液的恒定pH下進行，可采用線性梯度或階越式梯度洗脫。
5)再生：介質(zhì)使用數(shù)次(具體與樣品特性、樣品體積、金屬離子等有關(guān))后，或者螯合其他金屬離子前，需要進行再生處理。
首先用2~3CV的0.1M EDTA+0.5M NaCl pH7.0清洗柱子，并用2~3CV以上的0.5MNaCl溶液清洗，除去主柱上殘留的EDTA，然后再螫合相應的金屬離子。
若有變性蛋白質(zhì)或脂類物質(zhì)在再生過程中未能有效去除，可用原位清洗(CIP)的方法除去。
2原位清洗
為了避免不同樣品間的相互干擾，或者當介質(zhì)污染比較嚴重時(反壓增加)，需要對介質(zhì)進行在位清洗。在位清洗前，需要預先除去介質(zhì)上螯合的金屬離子(見再生操作)。在位清洗時，可采用反向沖洗的方法。
1)對于以離子鍵結(jié)合的蛋白，可用2~3CV以上的2MNaCl清洗，并用3CV以上的純水沖洗。
2)對沉淀蛋白、以疏水性結(jié)合的蛋白或脂蛋白，可用1MNaOH清洗(1~2h)，并用3~10 CV平衡液和3CV以上的純水沖洗。
3)對疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白和脂類物質(zhì)，可用5~10CV的70%乙醇或30%異丙醇清洗(20min以上)，并用3~10CV的純水沖洗。
此外，也可用2CV含去污劑的堿性或酸性溶液清洗。如用0.1~0.5%的非離子去污劑+0.1M乙酸沖洗1~2h，并用5~10CV的70%乙醇沖洗去除去污劑，然后用3~10CV的純水沖洗。
重要提示：如果使用Xtrap預裝柱，可省略裝柱步驟。
4
化工儀器網(wǎng)