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            腫瘤細(xì)胞如何培養(yǎng)

            閱讀:152      發(fā)布時(shí)間:2025-3-14
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            腫瘤細(xì)胞培養(yǎng)是指從腫瘤組織中分離出腫瘤細(xì)胞,在體外模擬體內(nèi)環(huán)境使其生長(zhǎng)、增殖的技術(shù)。以下是腫瘤細(xì)胞培養(yǎng)的基本方法:

            培養(yǎng)前準(zhǔn)備

            實(shí)驗(yàn)器材:準(zhǔn)備細(xì)胞培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)皿、移液管、離心管、顯微鏡、二氧化碳培養(yǎng)箱、超凈工作臺(tái)等。所有器材需經(jīng)過嚴(yán)格的清洗、消毒和滅菌處理,以防止微生物污染。

            培養(yǎng)基:根據(jù)腫瘤細(xì)胞的類型選擇合適的培養(yǎng)基,如 RPMI - 1640、DMEM 等。培養(yǎng)基中通常需添加 10% - 20% 的胎牛血清,以提供細(xì)胞生長(zhǎng)所需的營養(yǎng)物質(zhì)和生長(zhǎng)因子。此外,還需加入青霉素、鏈霉素等抗生素,以防止細(xì)菌污染,其終濃度一般為青霉素 100 U/mL、鏈霉素 100 μg/mL。

            消化液:常用的消化液為胰蛋白酶 - EDTA 混合液。一般胰蛋白酶的濃度為 0.25%,EDTA 的濃度為 0.02%。

            細(xì)胞取材與分離

            取材:在無菌條件下,從手術(shù)切除的腫瘤組織中獲取標(biāo)本。盡量選取腫瘤邊緣生長(zhǎng)活躍的部分,避免取到壞死灶。將取下的組織放入含有預(yù)冷的、含抗生素的 PBS 緩沖液的無菌容器中,盡快送往實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行處理。

            分離:將腫瘤組織在超凈工作臺(tái)上用 PBS 緩沖液沖洗數(shù)次,去除血液和雜質(zhì)。然后將組織剪成 1 - 2 mm3 的小塊,加入適量的消化液,在 37℃恒溫箱中消化 15 - 30 分鐘,期間輕輕搖晃容器,使組織塊與消化液充分接觸。當(dāng)組織塊變得松散,大部分細(xì)胞解離下來時(shí),加入含有血清的培養(yǎng)基終止消化。通過濾網(wǎng)過濾細(xì)胞懸液,去除未消化的組織塊,然后將細(xì)胞懸液離心,轉(zhuǎn)速一般為 1000 - 1500 rpm,離心 5 - 10 分鐘,棄去上清液,得到腫瘤細(xì)胞沉淀。

            腫瘤細(xì)胞如何培養(yǎng)

            細(xì)胞培養(yǎng)

            接種:用適量的培養(yǎng)基重懸細(xì)胞沉淀,調(diào)整細(xì)胞密度,一般為 1×10? - 1×10?個(gè) /mL。將細(xì)胞懸液接種到培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中,輕輕搖勻,使細(xì)胞均勻分布。然后將培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿放入二氧化碳培養(yǎng)箱中,在 37℃、5% CO?的條件下培養(yǎng)。

            換液:培養(yǎng)過程中,細(xì)胞會(huì)消耗培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質(zhì),并產(chǎn)生代謝廢物。因此,需要定期更換培養(yǎng)基,以維持細(xì)胞的生長(zhǎng)環(huán)境。一般每隔 1 - 2 天觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況并更換培養(yǎng)基。當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)至匯合度達(dá)到 80% - 90% 時(shí),需要進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

            細(xì)胞傳代

            消化:吸去培養(yǎng)瓶中的舊培養(yǎng)基,用 PBS 緩沖液沖洗細(xì)胞 1 - 2 次,去除殘留的培養(yǎng)基和血清。然后加入適量的消化液,覆蓋細(xì)胞表面,在 37℃下消化 1 - 3 分鐘。當(dāng)在顯微鏡下觀察到細(xì)胞變圓、間隙增大時(shí),加入含有血清的培養(yǎng)基終止消化。

            吹打與接種:用移液管輕輕吹打細(xì)胞,使細(xì)胞從培養(yǎng)瓶壁上脫落下來,形成細(xì)胞懸液。將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到離心管中,離心,轉(zhuǎn)速和時(shí)間與初次分離細(xì)胞時(shí)相同。棄去上清液,用適量的新鮮培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,然后按照一定的比例將細(xì)胞接種到新的培養(yǎng)瓶中,繼續(xù)培養(yǎng)。

            細(xì)胞凍存與復(fù)蘇

            凍存:當(dāng)細(xì)胞培養(yǎng)到一定數(shù)量時(shí),為了長(zhǎng)期保存細(xì)胞,需要進(jìn)行凍存。將細(xì)胞消化成單細(xì)胞懸液,離心后棄去上清液,加入適量的凍存液(一般為含 10% DMSO、20% 胎牛血清的培養(yǎng)基),使細(xì)胞密度為 1×10? - 1×10?個(gè) /mL。將細(xì)胞懸液分裝到凍存管中,密封好,然后按照一定的降溫程序進(jìn)行凍存,一般先在 4℃冰箱中放置 30 分鐘,再放入 - 20℃冰箱中放置 1 - 2 小時(shí),最后放入 - 80℃冰箱中過夜,次日轉(zhuǎn)移到液氮中保存。

            復(fù)蘇:從液氮中取出凍存管,迅速放入 37℃水浴鍋中,輕輕搖晃,使其在 1 - 2 分鐘內(nèi)快速解凍。然后將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到離心管中,加入適量的培養(yǎng)基,離心,棄去上清液,用新鮮培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,接種到培養(yǎng)瓶中,放入二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。



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