還原型谷胱gan肽（reduced glutathione, GSH）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

還原型谷胱gan肽試劑盒

正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定測定意義：

GSH 是細(xì)胞內(nèi)最主要的抗氧化巰基物質(zhì)，在抗氧化、蛋白質(zhì)巰基保護(hù)和氨基酸跨膜運輸?shù)戎芯哂兄匾饔?。還原型與氧化型比值（GSH/GSSG）是細(xì)胞氧化還原狀態(tài)的主要動態(tài)指標(biāo)。因此，測定細(xì)胞內(nèi)GSH和GSSG 含量以及GSH/GSSG 比值，能夠很好地反映細(xì)胞所處的氧化還原狀態(tài)。

測定原理：

DTNB 與GSH 反應(yīng)生成復(fù)合物，在 412nm 處有特征吸收峰；其吸光度與GSH 含量成正比。

組成：

自備儀器和用品：

可見分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調(diào)節(jié)移液器、1ml 玻璃比色皿和蒸餾水。

粗酶液提取：

組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一）進(jìn)行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 10min，取上清置冰上待測。

細(xì)菌、真菌：按照細(xì)胞數(shù)量（104 個）：試劑一體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細(xì)胞加入 1ml 試劑一），冰浴超聲波破碎細(xì)胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 8000g， 4℃，離心 10min，取上清置于冰上待測。

血清等液體：直接測定。

GSH 測定操作：

分光光度計預(yù)熱 30min，調(diào)節(jié)波長到 412 nm，蒸餾水調(diào)零。

試劑二置于 25℃（一般物種）或者 37℃（哺乳動物）水浴中保溫 30min。

空白管：取 1ml 玻璃比色皿，依次加入 100μl 蒸餾水，700μl 試劑二，200μl 試劑三，混勻靜置 2min 后測定 412 nm 吸光度A1。

測定管：取 1ml 玻璃比色皿，依次加入 100μl 上清液，700μl 試劑二，200μl 試劑三，混勻靜置 2min 后測定 412 nm 吸光度A2。

注意：空白管只需要測定一次。

GSH 含量計算公式：

GSH 標(biāo)準(zhǔn)曲線公式：y=1.5 x（x 為GSH 濃度，μ mol /ml；y 為吸光值）

GSH 計算：

按蛋白濃度計算

GSH（μ mol/ mg prot）=(A2－A1) ÷1.5×V 樣÷（V 樣×Cpr ）=0.667×(A2－A1) ÷Cpr

按樣本鮮重計算

GSH（μ mol/g 鮮重）=(A2－A1) ÷1.5×V 樣÷(V 樣÷V 樣總×W)=0.667×(A2－A1) ÷W

按細(xì)胞數(shù)量計算

GSH（μ mol /104 cell）=(A2－A1) ÷1.5×V 樣÷(V 樣÷V 樣總×細(xì)胞數(shù)量)=0.667×(A2－A1) ÷細(xì)胞數(shù)量

按液體體積計算

GSH（μ mol/ ml）=(A2－A1) ÷1.5×V 樣÷V 樣 =0.667×(A2－A1)

V 樣總：上清液總體積，1 ml；V 樣：加入反應(yīng)體系中上清液體積，100μl=0.1 ml；W：樣品質(zhì)量，g ；Cpr：上清液蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；

注意事項：

試劑一中含有蛋白質(zhì)沉淀劑，因此上清液不能用于蛋白濃度測定。

最di檢出限為 0.01mmol/L。

還原型谷胱gan肽試劑盒