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產(chǎn)品簡介：

支原體屬（Mycoplasma spp.）是支原體目、支原體科的 1 屬，有近百個種。它們是一類沒有細胞壁、高度多形性、能通過濾菌器、可用人工培養(yǎng)基培養(yǎng)增殖的最小原核細胞型微生物，大小為 0.1～0.3 微米。由于能形成絲狀與分枝形狀，故稱為支原體。支原體廣泛存在于人和動物體內(nèi)，大多不致病。但是它們常常污染培養(yǎng)細胞，污染發(fā)生率高達到 50%左右，故培養(yǎng)細胞的支原體污染已經(jīng)成為一個世界性的難題。由于當細胞（特別是傳代細胞）被支原體污染后，細胞內(nèi)的 DNA、RNA 及蛋白表達發(fā)生改變， 而細胞的生長率一般并未發(fā)生顯著的影響，故難以察覺，因此在早期快速診斷具有重要的意思。歐盟藥典已經(jīng)要求對使用培養(yǎng)細胞流程生產(chǎn)的生物工程制品進行 9 種支原體的核酸檢測。為此本公司開發(fā)了涵蓋歐盟所要求的 9 種支原體檢測試劑盒。

產(chǎn)品特點：

1.即開即用，用戶只需要提供樣品 DNA 模板。

2.引物和探針經(jīng)過優(yōu)化，分析靈敏性高，可以達到 100 拷貝/反應。

3.提供陽性對照，便于區(qū)分假陰性樣品。

4.特異性高，引物是根據(jù)支原體通用 DNA 高度保守區(qū)設(shè)計，不會跟其他生物的 DNA 發(fā)生交叉反應。

5.能檢測出至少 30 種最常見的支原體，其中包括歐盟所要求的 9 種，它們是萊氏無膽甾原體（Acholeplasma laidlawii）、發(fā)酵支原體（M.fermentans）、豬鼻支原體（M. hyorhinis）、口腔支原體（M. oral）、精氨-酸支原體（M. arginini）、肺炎支原體（M. pneumonia）、雞毒支原體（M. gallisepticum）、滑液支原體

（M. synoviae）和螺原體（Spiroplasma citri）。

6.既可用于定性檢測，又可用于定量檢測。用于定量檢測時線性范圍至少為 5 個數(shù)量級。

7.本產(chǎn)品足夠 50 次 20μL 體系的探針法熒光定量 PCR 反應。

8.支原體通用探針法熒光PCR試劑盒只能用于科研。

產(chǎn)品參數(shù)：

產(chǎn)品規(guī)格

50T/盒，可滿足一定規(guī)模的檢測需求。

檢測方法

實時熒光PCR，具有快速、準確、靈敏等優(yōu)點。

試劑盒成分

2×Probe qPCR MasterMix、熒光 PCR 專用模板稀釋液、超純水、支原體通用 qPCR 引物-探針干粉、支原體通用 qPCR 陽性對照(1E7 拷貝/μL)、使用手冊。

自備試劑

樣品 DNA，超純水，核酸純化試劑盒。

保存和運輸

低溫運輸，-20℃保存，保存期限為 24 個月。

使用方法：

一、稀釋標準曲線樣品（以 10E1-10E6 拷貝/μL 這 6 個 10 倍稀釋度為例）。由于標準品濃度非常高，因此下列稀釋操作一定要在獨立的區(qū)域進行，千萬不能污染樣品或本   試劑盒的其他成分）。為增加產(chǎn)品穩(wěn)定性和避免擴散傳染性病原，本產(chǎn)品不提供活體樣  品做陽性對照，只提供無傳染性的 DNA 片段作為陽性對照。

1. 標記 6 個離心管，分別為 6，5，4，3，2，1。

2.用帶芯槍頭分別加入 45 μL 熒光 PCR 專用模板稀釋液，最好用帶芯槍頭，下同）。

3.在 6 號管中加入 5 μL 1×10E7 拷貝/μL 的陽性對照(試劑盒提供)，充分震蕩 1分鐘，得 1×10E6 拷貝/μL 的標準曲線樣品。放冰上待用。

4.換槍頭，在 5 號管中加入 5 μL 1×10E6 拷貝/μL 的陽性對照(上步稀釋所得)，充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E5 拷貝/μL 的標準曲線樣品。放冰上待用。

5.換槍頭，在 4 號管中加入 5 μL 1×10E5 拷貝/μL 的陽性對照(上步稀釋所得)，充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E4 拷貝/μL 的標準曲線樣品。放冰上待用。

6.重復上面的操作直到得到 6 個稀釋度的標準曲線樣品。放冰上待用。

二、樣品 DNA 的制備

7.如果有 N 個樣品，最好設(shè)置 N+2 個提取，多出的一個是 PC（樣品制備陽性對照），

一個是 NC（樣品制備陰性對照）。可以用 10μL 上步所得 4 號稀釋液再加上一定量的水使總體積跟核酸制備試劑盒所要求的起始樣本體積一樣，以此作為 PC。另外用水作為 NC。

8.用自選方法純化樣品的DNA，本試劑盒跟市場上大多數(shù)樣品DNA-提取試劑盒兼容。也可以選購本公司的核酸-提取試劑。

三、Probe qPCR 反應（20μL 體系，在樣品制備室進行）

9.如果做定量分析并且只做 1 次重復，則標記 N+9 個 PCR 管，其中 N+2 個用于上步得到的 N+2 個樣品，1 個用于 PCR 陰性對照（用水做模板），6 個用于標準曲線。如果做定性分析并且只做 1 次重復，則標記 N+4 個 PCR 管，其中 N+2 個用于上步得到的 N+2 個樣品，1 個用于 PCR 陰性對照（用水做模板），1 個用于 PCR 陽性對照（直接用第 6 步第 4 號管的陽性對照稀釋液做模板）。下面只以定量分析為例描述操作步驟。

10.在標記管中按下表加入各成分（本表只列出一次重復。樣品管和陰性對照設(shè)置完畢后才設(shè)置陽性對照，并且陽性對照樣品要等所有管子蓋上蓋子儲存好后最后加）：

成分樣品管

N+2 個PCR 陰性

對照標準曲線樣品管

（1-6 管）

2×Probe qPCR MasterMix各 10 μL10 μL各 10 μL

支原體通用 qPCR

引物-探針混合液各 3 μL3 μL各 3 μL

N+2 個待測 DNA 樣本各 7 μL不加不加

超純水不加7 μL不加

第 6 步所得標準曲線樣品稀釋液

（1-6 號）

不加

不加各 7μL（2 號樣到 2 號管，3 號

樣到 3 號管…）

四、數(shù)據(jù)處理

12.如果把本試劑盒用于定量檢測，則以陽性對照濃度的 log 值為橫軸，以 Ct 值為縱軸，繪制標準曲線。再以待測樣品的 Ct 值從標準曲線上推算出樣品 DNA 濃度的log 值，再推算出其濃度。

13.如果把本試劑盒用于定性檢測，只判斷陽性或陰性，則陰性對照必須無 Ct 或 Ct 大于或等于 40。陽性對照必須有熒光對數(shù)增長，有典型擴增曲線，Ct 值應該小于40，否則實驗無效。如果實驗有效，則分析待測樣品，如果無 Ct 或 Ct 大于或等于 40，則為陰性。如果 Ct 小于 40 則為陽性。

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