WB實驗又稱免疫印跡實驗,是根據(jù)抗原抗體的特異性結(jié)合檢測復(fù)雜樣品中的某種蛋白的方法。該法是在凝膠電泳和固相免疫測定技術(shù)基礎(chǔ)上發(fā)展起來的一種新的免疫生化技術(shù),具有SDS-PAGE的高分辨力和固相免疫測定的高特異性和敏感性,現(xiàn)已成為蛋白分析的一種常規(guī)技術(shù)。
對于一直都在做蛋白研究的你,在樣品制備中的小細節(jié)你都了解嗎?這里為大家整理了蛋白樣品制備中大大小小的常見問題,一起來學(xué)習(xí)吧!
1、所有WB實驗都用總蛋白就可以完成嗎?
當(dāng)然不是,要根據(jù)WB的實驗?zāi)康膩泶_定提取哪類蛋白,如需驗證某些低豐度蛋白,或蛋白定位,或組分間表達量對比,則需要進行亞細胞結(jié)構(gòu)分離或組分分離。
2、如需添加蛋白酶抑制劑該如何添加?
內(nèi)源性蛋白酶存在于胞漿中,所以要在細胞裂解前加入抑制劑到達理想的抑制效果,提取時將抑制劑添加到裂解液中,工作濃度1X。例如100X蛋白酶抑制劑,1ml裂解液中添加10ul即可。
3、蛋白樣品如何儲存?
A蛋白樣品不建議久存,也不要反復(fù)凍融。下游做WB實驗,建議蛋白濃度測定后,加入loadingbuffer煮樣,煮后根據(jù)實驗需要分裝成小管在-80℃,下次使用前拿出小管再次煮樣即可。
4、樣品上樣前怎么處理?
蛋白濃度測定后,建議將各個樣品稀釋到某一固定濃度(稀釋可以PBS,水或裂解液),加入loadingbuffer后,在沸水中煮3-5分鐘,使蛋白充分變性,也可使用PCR儀95度加熱5分鐘。
5、組織樣品含血量多可以直接提蛋白嗎?
如組織樣品中含血較多,血紅蛋白可能會影響WB實驗,可以在組織樣品裂解前使用紅細胞裂解液進行處理后,再進行蛋白提取。
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