柱式組織基因組提取試劑盒
產(chǎn)品貨號:28105
產(chǎn)品規(guī)格:100次/200次
產(chǎn)品簡介:
本試劑盒適合于從新鮮或冷凍的動物、人組織中提取高純度總DNA。本品可純化獲得分子量最大為50 kb的DNA片段,純化過程不需使用苯酚或氯仿等有毒溶劑,無需乙醇沉淀。本試劑盒采用優(yōu)化的緩沖體系使裂解液中的DNA高效特異的結(jié)合到硅基質(zhì)離心吸附柱上,PCR和其他酶促反應(yīng)的抑制劑可通過兩步洗滌步驟被有效去除,最后使用低鹽緩沖液或水洗脫,即可得到高純度DNA。純化得到的DNA可以直接用于酶切、PCR、Real-Time PCR、文庫構(gòu)建、Southern Blot、分子標(biāo)記等下游實驗。
自備試劑:無水乙醇
包裝清單:
產(chǎn)品名稱 | 100次包裝 | 200次包裝 | 儲存條件 |
Buffer GTL | 20ml | 40ml | 室溫 |
Buffer PG | 20ml | 40ml | 室溫 |
Buffer PS | 20ml | 40ml | 室溫 |
Buffer PW | 18ml(臨用前加入72ml無水乙醇) | 36ml(臨用前加入144ml無水乙醇) | 室溫 |
Buffer EB | 10ml | 20ml | 室溫 |
Proteinase K溶液 | 2ml | 4ml | -20℃ |
Spin Columns | 100個 | 200個 | 室溫 |
Collection Tubes | 100個 | 200個 | 室溫 |
操作步驟:
1. 如果提取材料為動物組織,取25mg(脾組織用量應(yīng)少于10mg);如果材料為鼠尾,取一段長度為0.4-0.6cm的大鼠鼠尾或兩段長度為0.4-0.6cm的小鼠鼠尾。
a. 樣本進行液氮研磨或切成小塊后置于1.5ml離心管中,加入180 μl Buffer GTL,將不同樣品做好標(biāo)記。
b. 若使用勻漿器處理樣本,勻漿前向樣本中加入不超過80 μl Buffer GTL,勻漿后加入100 μl Buffer GTL。
注意:
1) 確保各組織的量不要超出推薦范圍。
2) 組織樣本在加入Buffer GTL之前用液氮研磨或加入Buffer GTL用勻漿器勻漿處理,可以增加裂解效率。
2. 加入20 μl Proteinase K,渦旋震蕩使樣品*混勻。56℃水浴,直至組織*裂解,孵育過程中可每隔一段時間顛倒或震蕩離心管使樣品分散。
注意:
1) 不同組織消化時間不同,通常1-3小時即可完成,鼠尾需要消化6-8小時,必要時過夜消化,不會影響后續(xù)操作。
2) 如果孵育和渦旋震蕩后仍然有膠狀物質(zhì),延長56℃孵育時間或再加入20 μl Proteinase K消化。
3) 如需去除RNA,可在上述步驟完成后,加入4μl的濃度為100 mg/ml的RNase A溶液,渦旋15秒,室溫放置5-10分鐘。
3. 加入200 μl Buffer PG,渦旋震蕩充分混勻,70℃水浴10分鐘。短暫離心后加入200 μl無水乙醇,渦旋震蕩充分混勻。
注意:
1) 加入Buffer PG和無水乙醇后要立即渦旋震蕩混勻。
2) 加入Buffer PG和無水乙醇后可能會產(chǎn)生白色沉淀,不會影響后續(xù)實驗。一些組織(如脾,肺)在加入Buffer PG和無水乙醇后可能形成溶膠狀產(chǎn)物,此時推薦進行劇烈震蕩或渦旋處理。
4. 柱平衡:向已裝入收集管(Collection Tubes)中的吸附柱(Spin Columns)中加入200μl Buffer PS,12000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
5. 將步驟3所得溶液短暫離心,全部加入到已裝入收集管的吸附柱(Spin Columns)中,若一次不能加完溶液,可分多次轉(zhuǎn)入。12000 rpm離心1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
6. 向吸附柱中加入450 μl Buffer PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),12000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
注意:如果純化的DNA用于鹽敏感的實驗(例如平末端連接或直接測序),建議加入Buffer PW靜置2-5分鐘再離心。
7. 重復(fù)步驟6。
8. 12000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液。
注意:
這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶促反應(yīng)(酶切、PCR等)。
9. 將吸附柱放到一個新的1.5 ml離心管(自備)中,向吸附膜中間位置懸空滴加50μl Buffer EB,室溫放置2分鐘。12000 rpm離心1分鐘,收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
注意:
1) 洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液,應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5之間(可以用NaOH將水的pH值調(diào)到此范圍)。
2) 為了提高基因組提取量,可將離心得到的溶液重新加到吸附柱中,室溫放置2分鐘,12000 rpm離心1分鐘。
3) 洗脫體積不應(yīng)小于30μl,體積過少會影響回收效率。
注意事項 :
1. 第一次使用前應(yīng)按照試劑瓶標(biāo)簽的說明在Buffer PW中加入無水乙醇(Buffer PW 100次包裝18ml,使用前加入72ml無水乙醇;Buffer PW 200次包裝36ml,使用前加入144ml無水乙醇)。
2. 所有離心步驟均可室溫下進行。
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