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            熒光定量pcr檢測實驗操作步驟

            來源:上海研啟生物科技有限公司   2022年07月27日 15:56  

            實驗方法原理 實時熒光定量PCR技術(shù),是指在PCR反應體系中加入熒光基團,利用熒光信號積累實時監(jiān)測整個PCR進程,-后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。
            實驗材料
            細胞樣品
            試劑、試劑盒
            RNA提取試劑盒 熒光定量PCR Mix TRIZOL dNTP 氯-仿 逆轉(zhuǎn)錄酶MMLV 異丙醇 Taq酶 DEPC水 ddH2O TE MgCl2 瓊脂糖 溴化乙錠 MOPS 甲醛 乙酸鈉 EDTA EB 溴酚蘭
            儀器、耗材
            離心管 離心機 風光光度計 電泳槽 凝膠板 Realtime PCR儀

            實驗步驟
            一、 樣品RNA的抽提
            1.  取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。
            2.  兩相分離 每1 ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2 ml的氯-仿,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后,15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12 000 rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚氯-仿相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配于水相中。水相上層的體積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。
            3.  RNA沉淀 將水相上層轉(zhuǎn)移到一干凈無RNA酶的離心管中。加等體積異丙醇混合以沉淀其中的RNA,混勻后15到30℃孵育10分鐘后,于4℃下12 000 rpm 離心10分鐘。此時離心前不可見的RNA沉淀將在管底部和側(cè)壁上形成膠狀沉淀塊。
            4.  RNA清洗 移去上清液,每1 mlTRIZOL試劑裂解的樣品中加入至少1 ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPCH2O配制),清洗RNA沉淀?;靹蚝?,4℃下7 000 rpm離心5分鐘。
            5.  RNA干燥 小心吸去大部分乙醇溶液,使RNA沉淀在室溫空氣中干燥5-10分鐘。

            6.  溶解RNA沉淀 溶解RNA時,先加入無RNA酶的水4 0ul用槍反復吹打幾次,使其*溶解,獲得的RNA溶液保存于-80℃待用。


            二、 RNA質(zhì)量檢測
            1.  紫外吸收法測定
            先用稀釋用的TE溶液將分光光度計調(diào)零。然后取少量RNA溶液用TE稀釋(1:100)后,讀取其在分光光度計260nm和280nm處的吸收值,測定RNA溶液 濃度和純度。
             (1)濃度測定
            A260下讀值為1表示40 ug RNA/ml。樣品RNA濃度(μg/ml)計算公式為:A260 x 稀釋倍數(shù) x 40 ug/ml。具體計算如下:
            RNA溶于40 ul DEPC水中,取5 ul,1:100稀釋至495 ul的TE中,測得A260 = 0.21
            RNA 濃度= 0.21 x 100 x 40 ug/ml = 840 ug/ml 或 0.84 ug/ul
            取5 ul用來測量以后,剩余樣品RNA為35 ul,剩余RNA總量為:
            35 ul x 0.84 ug/ul = 29.4 ug
            (2)純度檢測

            RNA溶液的A260/A280的比值即為RNA純度,比值范圍1.8到2.1。


            2.  變性瓊脂糖凝膠電泳測定
            (1)制膠
            1 g瓊脂糖溶于72 ml水中,冷卻至60℃,10 ml的10 x MOPS電泳緩沖液和18 ml的37% 甲醛溶液(12.3 M)。
            10x MOPS電泳緩沖液
            濃度  成分
            0.4 M  MOPS,pH 7.0
            0.1 M  乙酸鈉
            0.01 M  EDTA
            灌制凝膠板,預留加樣孔至少可以加入25 μl溶液。膠凝后取下梳子,將凝膠板放入電泳槽內(nèi),加足量的1xMOPS電泳緩沖液至覆蓋膠面幾個毫米。
            (2)準備RNA樣品
            取3 ugRNA,加3倍體積的甲醛上樣染液,加EB于甲醛上樣染液中至終濃度為10 ug/ml。加熱至70℃孵育15分鐘使樣品變性。
            (3)電泳
            上樣前凝膠須預電泳5 min,隨后將樣品加入上樣孔。5-6 V/cm電壓下2 h,電泳至溴酚蘭指示劑進膠至少2-3 cm。
            (4)紫外透射光下觀察并拍照

            28S和18S核糖體RNA的帶非常亮而濃(其大小決定于用于抽提RNA的物種類型),上面一條帶的密度大約是下面一條帶的2倍。還有可能觀察到一個geng小稍微擴散的帶,它由低分子量的RNA(tRNA和5S核糖體RNA)組成。在18S和28S核糖體帶之間可以看到一片彌散的EB染色物質(zhì),可能是由mRNA和其它異型RNA組成。RNA制備過程中如果出現(xiàn)DNA污染,將會在28S核糖體RNA帶的上面出現(xiàn),即geng高分子量的彌散遷移物質(zhì)或者帶,RNA的降解表現(xiàn)為核糖體RNA帶的彌散。用數(shù)碼照相機拍下電泳結(jié)果。


            三、樣品cDNA合成
            1.  反應體系
            序號          反應物           劑量
            1          逆轉(zhuǎn)錄buffer       2 ul
            2         上游引物              0.2 ul
            3         下游引物              0.2 ul
            4          dNTP                   0.1 ul
            5       逆轉(zhuǎn)錄酶MMLV     0.5 ul
            6         DEPC水              5 ul
            7          RNA模版            2 ul
            8           總體積               10 ul
            輕彈管底將溶液混合,6 000 rpm短暫離心。
            2.  混合液在加入逆轉(zhuǎn)錄酶MMLV 之前先70℃干浴3分鐘,取出后立即冰水浴至管內(nèi)外溫度一致,然后加逆轉(zhuǎn)錄酶0.5 ul,37℃水浴60分鐘。

            3.  取出后立即95℃干浴3分鐘,得到逆轉(zhuǎn)錄終溶液即為cDNA溶液,保存于-80℃待用。

             

            四、 梯度稀釋的標準品及待測樣品的管家基因(β-actin)實時定量PCR
            1.  β-actin陽性模板的標準梯度制備 陽性模板的濃度為1011,反應前取3 μl按10倍稀釋(加水27 ul并充分混勻)為1010,依次稀釋至109、108、107、106、105、104,以備用。
            2.  反應體系如下:
            標準品反應體系
            序號           反應物                           劑量
            1       SYBR Green 1 染料             10 ul
            2       陽性模板上游引物F              0.5 ul
            3      陽性模板下游引物R              0.5 ul
            4                 dNTP                            0.5 ul
            5                 Taq酶                           1 ul
            6           陽性模板DNA                    5 ul
            7              ddH2O                            32.5 ul
            8               總體積                            50 ul
            輕彈管底將溶液混合,6 000 rpm短暫離心。
            3.  管家基因反應體系:
            序號            反應物                                劑量
            1      SYBR Green 1 染料                   10 ul
            2      內(nèi)參照上游引物F                         0.5 ul
            3     內(nèi)參照下游引物R                         0.5 ul
            4               dNTP                                    0.5 ul
            5               Taq酶                                   1 ul
            6      待測樣品cDNA                             5 ul
            7              ddH2O                                  32.5 ul
            8             總體積                                    50 ul
            輕彈管底將溶液混合, 6000 rpm短暫離心。

            3.  制備好的陽性標準品和檢測樣本同時上機,反應條件為:93℃?2分鐘,然后93℃ 1分鐘,55℃ 2分鐘,共40個循環(huán)。


            五、 制備用于繪制梯度稀釋標準曲線的DNA模板
            1.  針對每一需要測量的基因,選擇一確定表達該基因的cDNA模板進行PCR反應。
            2.  反應體系
            序號                     反應物                        劑量
            1                     10× PCR緩沖液            2.5 ul
            2                           MgCl2 溶液              1.5 ul
            3                           上游引物F                 0.5 ul
            4                           下游引物R                0.5 ul
            5                            dNTP混合液            3 ul
            6                            Taq聚合酶               1 ul
            7                             cDNA                       1 ul
            8                    加水至總體積為               25 ul
            輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
            35個PCR循環(huán)(94℃1分鐘;55℃1分鐘;72℃1分鐘); 72?C延伸5分鐘。
            (3)PCR產(chǎn)物與 DNA Ladder在2%瓊脂糖凝膠電泳,溴化乙錠染色,檢測PCR產(chǎn)物是否為單一特異性擴增條帶。

            (4)將PCR產(chǎn)物進行10倍梯度稀釋: 將PCR產(chǎn)物進行10倍梯度稀釋: 設定PCR產(chǎn)物濃度為1×1010,依次稀釋至109、108、107、106、105、104幾個濃度梯度。


            六、 待測樣品的待測基因?qū)崟r定量PCR
            1.  所有cDNA樣品分別配置實時定量 PCR反應體系。
            2.  體系配置如下:
            序號             反應物                                劑量
            1            SYBR Green 1 染料               10 ul
            2                上游引物                               1 ul
            3                下游引物                               1 ul
            4                  dNTP                                   1 ul
            5              Taq聚合酶                               2 ul
            6             待測樣品cDNA                        5 ul
            7                   ddH2O                              30 ul
            8                   總體積                               50 ul
            輕彈管底將溶液混合,6 000 rpm短暫離心。

            (3)將配制好的PCR反應溶液置于Realtime PCR儀上進行PCR擴增反應。反應條件為:93℃ 2分鐘預變性,然后按93℃ 1分鐘,55℃1分鐘,72℃1分鐘,共40做個循環(huán),后72℃7分鐘延伸。


            七、 實時定量PCR使用引物列表
            引物設計軟件:Primer Premier 5.0,并遵循以下原則:引物與模板的序列緊密互補;引物與引物之間避免形成穩(wěn)定的二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu);引物不在模板的非目的位點引發(fā)DNA 聚合反應(即錯配)。
            八、電泳

            各樣品的目的基因和管家基因分別進行Realtime PCR反應。PCR產(chǎn)物與 DNA Ladder在2%瓊脂糖凝膠電泳,GoldView染色,檢測PCR產(chǎn)物是否為單一特異性擴增條帶。


            注意事項
            1.熒光閾值:在熒光擴增曲線指數(shù)增長長期設定一個熒光強度標準(即PCR擴增產(chǎn)物量標準)。熒光閾值可設定在指數(shù)擴增階段任意位置上,但實際應用要結(jié)合擴增效率,線性回歸系數(shù)等參數(shù)來綜合考慮。
            2.Ct值:在PCR擴增過程中,擴增產(chǎn)物(熒光信號)到達閾值時所經(jīng)過的擴增循環(huán)次數(shù)。Ct值具有極-好的重復性。
            其他
            實時熒光定量PCR技術(shù)有效地解決了傳統(tǒng)定量只能終點檢測的局限,實現(xiàn)了每一輪循環(huán)均檢測一次熒光信號的強度,并記錄在電腦軟件之中,通過對每個樣品Ct值的計算,根據(jù)標準曲線獲得定量結(jié)果。因此,實時熒光定量PCR無需內(nèi)標是建立在兩個基礎之上的:
            1)Ct值的重現(xiàn)性PCR循環(huán)在到達Ct值所在的循環(huán)數(shù)時,剛剛進入真正的指數(shù)擴增期(對數(shù)期),此時微小誤差尚未放大,因此Ct值的重現(xiàn)性極-好,即同一模板不同時間擴增或同一時間不同管內(nèi)擴增,得到的Ct值是恒定的。
            2)Ct值與起始模板的線性關(guān)系由于Ct值與起始模板的對數(shù)存在線性關(guān)系,可利用標準曲線對未知樣品進行定量測定,因此,實時熒光定量PCR是一種采用外標準曲線定量的方法。
            外標準曲線的定量方法相比內(nèi)標法是一種準確的、值得信賴的科學方法。利用外標準曲線的實時熒光定量PCR是迄今為止定量準確,重現(xiàn)性-好的定量方法,已得到*的*,廣泛用于基因表達研究、轉(zhuǎn)基因研究,藥物療效考核、病原體檢測等諸多領(lǐng)域。


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