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            基于細胞涂色檢驗的表型分析的簡化工作流程

            來源:美谷分子儀器(上海)有限公司   2023年08月03日 11:19  

            基于細胞涂色檢驗的表型分析的簡化工作流程

            Angeline Lim, Misha Bashkurov | Molecular Devices LLC

            David Egan, Victor Wong | Core Life Analytics

            簡介

            細胞涂色檢驗(cell painting assay)等多參數(shù)高內(nèi)涵篩選方法越來越多的被應(yīng)用到從藥物研發(fā)到功能基因組學(xué)篩選等領(lǐng)域。細胞涂色檢驗用到多達6種熒光染料在單細胞水平來標記及觀察各種細胞器。分析中獲得的所有特點都能賦予指定的細胞的細胞表征。另外,通過對比新型化合物和參比化合物的表型特征能了解到作用機制。大多數(shù)生物學(xué)家都熟悉細胞涂色檢驗所用的方法。然而,要想在海量的實驗數(shù)據(jù)中獲得有意義的信息還需要計算工具的輔助。

            在此,我們介紹了一種易于完成的細胞涂色檢驗的完整流程。通過這一方法,我們發(fā)現(xiàn)用同一種化合物處理的細胞表現(xiàn)出相同的表性特征。分層聚類分析能將紫杉醇和魚藤酮之類的高毒性化合物分到同一組。氯喹和粉防己堿這兩種影響自噬的化合物同樣被分到同一組里。這些結(jié)果表明此處提出的工作流程是開展高內(nèi)涵表型分析可行且可靠的方法。

            方法

            基于圖像的分析工作流程概述。以下列出了每個步驟的詳細信息。

            1、U2OS細胞ATCC)按每孔2000個細胞接種。

            2、總共測試了11中化合物,每種化合物按照1:3梯度稀釋(共7個濃度),每個濃度4個復(fù)孔,同時加入合適的對照。化合物如下:Ca-074-Me,羰基氰化物間氯苯腙(CCCP),氯喹(chloroquine),細胞松弛素Dcytochalasin D),依托泊苷(etoposide),拉氏菌素Blatrunculin B),雷帕霉素(rapamycin),魚藤酮(rotenone),十字孢堿(staurosporine),紫杉醇(paclitaxel)和粉防己堿tetrandrine)。

            3、化合物處理24小時后,根據(jù)Bray等人的實驗方案用細胞涂色染料對細胞進行染色。包括以下染料:MitoTracker Deep Red,wheat-germ agglutinin/Alexa Fluor 555,Concanavalin A/Alexa Fluor 488,phalloidin/Alexa Fluor 568,SYTO14Hoechst 33342。

            4美谷分子儀器的ImageXpress®顯微共聚焦高內(nèi)涵成像系統(tǒng)(ImageXpress® Micro Confocal High-Content Imaging SystemMolecular Devices進行圖像采集,物鏡為20× Plan Apo objective激發(fā)/發(fā)射濾光片如下:DAPI 377/447,FITC 475/536TRITC 543/593,Texas Red 560/624,Cy5 631/692。

            5IN CartaTM圖像分析軟件進行圖像分析。選擇的280測量包括跟強度、紋理、形狀、空間關(guān)系及共定位評分相關(guān)的參數(shù)。

            6、細胞級數(shù)據(jù)已上傳至StratoMineRTM進行進一步數(shù)據(jù)分析。簡言之就是實施了質(zhì)量控制、微孔板正規(guī)化、數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換以及特征標準化。用主成分分析(principal component analysis,PCA)降低數(shù)據(jù)集的維度。進一步的下游分析,例如命中選擇及聚類分析,則基于主成分和推導(dǎo)的表型距離評分。

            結(jié)果

            血管生成建模

            在我們的模型檢測中,U2OS細胞11種化合物處理24小時,之后按照以前發(fā)表的實驗方案處理。ImageXpress顯微共聚焦系統(tǒng)進行細胞成像(圖1)。

            1. 細胞涂色檢驗。細胞經(jīng)化合物處理,染色然后成像。對照孔各個采集通道的成像示例。最后一個圖片展示了肌動蛋白、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和細胞核的復(fù)合圖像。

            特征提取

            使用IN Carta軟件,可調(diào)整圖像分析程序以實現(xiàn)細胞及細胞器的可靠檢測(圖2。深度學(xué)習(xí)語義分割模塊(SINAP)可以用來提升挑戰(zhàn)性特征的檢測。預(yù)訓(xùn)練的深度學(xué)習(xí)模型可用來檢測細胞核或細胞。或者,用戶也可以根據(jù)自己感興趣的特定對象來訓(xùn)練新的模型。

            2. IN Carta軟件中的特征提取。A)在IN Carta軟件中建立分析實驗方案來分割各個細胞結(jié)構(gòu)。此處我們用內(nèi)置的細胞核模型實現(xiàn)了處理的細胞核的有效分割。其他細胞特征包括細胞質(zhì)區(qū)域、肌動蛋白絲網(wǎng)絡(luò)、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)及線粒體也得到了分割。在設(shè)定分析時選擇了跟強度、紋理、共定位和形狀相關(guān)的測量值。在實驗方案中我們共選擇了細胞及亞細胞結(jié)構(gòu)的280個測量值。BIN Carta軟件中帶有特征掩飾疊加的圖像示例。

            數(shù)據(jù)分析工作流程

            IN Carta軟件中獲得的測量值上傳至HC StratoMineR進行進一步數(shù)據(jù)分析(圖3)。

            3A-B. 利用HC StratoMineR進行數(shù)據(jù)分析。AHC StratoMineR是一個基于網(wǎng)絡(luò)的平臺,能通過典型的工作流程指導(dǎo)用戶進行高內(nèi)涵多參數(shù)數(shù)據(jù)分析。BQC步驟的散點圖。X軸代表了所有樣本,Y軸代表了選中的特征(細胞核區(qū)域)。

            3C-D. 利用HC StratoMineR進行數(shù)據(jù)分析。C主成分分析(廣義加權(quán)最小二乘法)將數(shù)據(jù)減低至15個成分。PCA4的特征貢獻以極坐標圖顯示。D3D散點圖顯示了數(shù)據(jù)點與3種不同PCA之間的互作。

            表型特征比較-聚類

            距離分數(shù)根據(jù)選定的主成分分數(shù)進行計算。這一分數(shù)代表了樣本與陰性對照之間的表型距離,能用于篩選分析中的命中選擇。隨后,可基于選中的特征或成分進行分層聚類分析。

            用同一種化合物處理的細胞聚類到一起(圖4A,簇9,10。已知具有相似細胞效應(yīng)的化合物也聚類到一起。肌動蛋白聚合抑制劑細胞松弛素D拉氏菌素B共同存在于簇6中。在自噬信號通路中有作用的粉防己堿和氯喹也聚類到一起(圖4B)。

            4. 聚類分析。A樹狀圖代表了分層關(guān)系。屬于相同簇的孔(編號)用彩條表示。每個孔基于距離分數(shù)的p展示了出來。注意,簇9僅由十字孢堿處理的細胞組成,而簇10僅由依托泊苷處理的細胞組成。B)屬于某些簇的化合物處理的細胞示例。簇5粉防己堿和氯喹處理的細胞組成。兩者處理的孔中內(nèi)質(zhì)網(wǎng)點都有增加。簇4魚藤酮和紫杉醇處理的細胞組成,這些孔中的部分細胞有起泡出現(xiàn)。表明了細胞毒性作用。

            基于表型特征的劑量-反應(yīng)建模

            圖5. 劑量-反應(yīng)曲線。使用從命中選擇步驟獲得的表型距離分數(shù)繪制IC StratoMineR中每一種化合物劑量反應(yīng)曲線。Y軸代表了表型距離,X軸代表濃度。

            結(jié)論

            我們的結(jié)果表明利用ImageXpress顯微共聚焦系統(tǒng)、IN Carta軟件和StratoMineR實現(xiàn)基于圖像的分析的可行性。

            IN Carta軟件結(jié)合了易用性及更高級的特征分割選項SINAP),可實現(xiàn)細胞特征的可靠分割。

            StratoMineR平臺允許非專家用戶根據(jù)直觀的引導(dǎo)式工作流程進行快速的表型數(shù)據(jù)分析。

            參考文獻

            1.       Bray MA et.al., Nat Protoc. 2016 Sep;11(9):1757–74.

            2.       Gong K et.al., J Biol Chem. 2012 Oct 12;287(42):35576–88.

            3.       Gustafsdottir SM et.al., PLoS One. 2013 Dec 2;8(12):e80999.

            4.       Mauthe M, et.al., Autophagy. 2018;14(8):1435–1455.

            5.       Omta WA, et.al., Assay Drug Dev Technol. 2016 Oct;14(8):439–452.

            6.       Rohban MH, et.al., Elife. 2017 Mar 18;6:e24060.

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