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            漲知識(shí) | qPCR專場(chǎng)七:認(rèn)識(shí)不同熒光定量PCR方法

            來源:翌圣生物科技(上海)股份有限公司   2023年10月08日 10:49  

            漲知識(shí) | qPCR專場(chǎng)七:認(rèn)識(shí)不同熒光定量PCR方法

             

            熒光定量PCR是實(shí)驗(yàn)室中出鏡率非常高的一種檢測(cè)方法。該方法通過在PCR體系中添加熒光基團(tuán)來記錄DNA產(chǎn)物的累積情況,從而達(dá)到對(duì)PCR過程進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)控的目的,并且可以通過數(shù)據(jù)分析計(jì)算出起始模板量,這就是“熒光定量”中“定量”一詞的來源。

            熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)因?yàn)殪`敏度高所以經(jīng)常是差之毫厘謬以千里,所以在實(shí)驗(yàn)過程中,我們需要注意諸多細(xì)節(jié),謹(jǐn)慎操作。小伙伴們看到這里就要著急了,我怎樣才能做好qPCR實(shí)驗(yàn),拿到實(shí)驗(yàn)結(jié)果,發(fā)表高分文章,走上人生呢?

             

             

            熒光定量PCR其本質(zhì)是通過熒光探針或熒光DNA結(jié)合染料和實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀器對(duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)和定量,儀器在PCR熱循環(huán)的過程中測(cè)量熒光。市面上有多種不同類型的熒光定量PCR試劑,這些熒光定量PCR試劑的差別是什么?如何根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)?zāi)繕?biāo)去選擇呢?小翌為大家細(xì)細(xì)道來~

             

            圖.PCR循環(huán)流程

             

             

             
            染料法與探針法的區(qū)別
             
             
            非特異性熒光標(biāo)記:染料法
             
             

             

            SYBR Green 染料是一種熒光DNA結(jié)合染料,能夠結(jié)合在任何雙鏈DNA中的小溝上。該染料在游離狀態(tài)下,僅發(fā)出微弱的熒光,一旦和雙鏈DNA結(jié)合,熒光信號(hào)便大大增強(qiáng)。在PCR循環(huán)中,每形成一條DNA雙鏈,就有一定數(shù)量染料結(jié)合上去。隨著PCR反應(yīng)的進(jìn)行,越來越多的雙鏈DNA形成,熒光強(qiáng)度也隨之增強(qiáng)。

             

             

            由于SYBR Green 染料會(huì)和任意雙鏈DNA結(jié)合并發(fā)出熒光信號(hào)。當(dāng)反應(yīng)中出現(xiàn)引物二聚體或者非特異擴(kuò)增時(shí),便有可能產(chǎn)生明顯的假陽性信號(hào)。具體的表現(xiàn)是熔解曲線呈現(xiàn)雙峰或多峰,擴(kuò)增曲線中的Ct值相比正常值偏小。

             

             
            特異性熒光標(biāo)記:探針法
             
             
            目前市面上幾乎所有的探針法熒光定量PCR都是利用了熒光共振能量轉(zhuǎn)移現(xiàn)象,探針上存在一定對(duì)能產(chǎn)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移的基團(tuán),利用PCR反應(yīng)中的一些類似酶切、雜交等過程,使兩個(gè)基團(tuán)的距離發(fā)生變化,使得整個(gè)PCR系統(tǒng)中的熒光強(qiáng)度或者熒光種類發(fā)生變化,這種變化與PCR產(chǎn)物類型和產(chǎn)物量有直接關(guān)系。

             

             

            探針法熒光定量有多種類型,例如TaqMan探針法、雙雜交探針法、分子信標(biāo)探針法和蝎形探針法等。其中TaqMan探針是最常見的探針方法,通常是設(shè)計(jì)一條與擴(kuò)增產(chǎn)物能互補(bǔ)能互補(bǔ)雜交的探針,在探針的5’端標(biāo)記報(bào)告基團(tuán),在探針3’端標(biāo)記淬滅基團(tuán)。當(dāng)探針完整時(shí),報(bào)告基團(tuán)和淬滅基團(tuán)之間距離很近,由于熒光共振能量轉(zhuǎn)移存在,報(bào)告基團(tuán)在入射光激發(fā)下不會(huì)發(fā)出熒光信號(hào)。PCR反應(yīng)進(jìn)行時(shí),探針雜交在引物下游的位置,當(dāng)DNA擴(kuò)增酶移動(dòng)到探針位置上時(shí),酶本身5’-3’端的外切酶活性會(huì)從5’端切割探針,從而使5’端報(bào)告基團(tuán)和3’端標(biāo)記淬滅基團(tuán)分離,當(dāng)基團(tuán)之間的距離超過熒光共振能量轉(zhuǎn)移的范圍,報(bào)告基團(tuán)在光照射下,就可發(fā)出一定的熒光。由于探針是針對(duì)目標(biāo)序列設(shè)計(jì),是特異性的,故而熒光的種類和光信號(hào)強(qiáng)度能特異性指示目標(biāo)序列的種類和數(shù)量。

             

             
            染料法VS.探針法
             
             

             


            染料法熒光定量PCR

            探針法熒光定量PCR

            特異性

            靈敏度

            可重復(fù)性

            多重反應(yīng)

            -

            可多重

            探針/引物設(shè)計(jì)

            引物

            探針+引物

            實(shí)驗(yàn)成本

            應(yīng)用

            特定基因表達(dá)差異分析;DNA定量

            特定基因表達(dá)分析;DNA定量;SNPs基因分析;基因突變檢測(cè);產(chǎn)前遺傳病檢測(cè);傳染病早期病原體檢測(cè)

             

             

             
            不同應(yīng)用的染料法熒光定量
             
            進(jìn)行熒光定量時(shí),靶標(biāo)均為DNA模板,但是不同來源的DNA,會(huì)存在一定的差異。通常進(jìn)行染料法熒光定量時(shí),選用的最適DNA產(chǎn)物長(zhǎng)度為80-300bp。但是當(dāng)DNA由18-28個(gè)核苷酸組成的miRNA反轉(zhuǎn)錄得到時(shí),選用正確的熒光定量試劑變得尤為重要。

             

             
            miRNA的染料法熒光定量檢測(cè)
             
             
            miRNA的長(zhǎng)度很短,通常約18-28個(gè)核苷酸,因此無法采用常見的普通反轉(zhuǎn)錄試劑盒和熒光定量PCR試劑進(jìn)行miRNA的檢測(cè)。目前,市面上采用兩種方法對(duì)miRNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,一種是加尾法(加A法),另一種是莖環(huán)法。兩種方式均是通過人為加長(zhǎng)序列的方式獲取第一鏈cDNA,該cDNA的長(zhǎng)度通常在60-80nt左右。

            另外不同miRNA之間堿基序列的差異不大,在僅有的18-28個(gè)核苷酸內(nèi),不同miRNA甚至?xí)霈F(xiàn)僅1個(gè)核苷酸不同的現(xiàn)象,高效特異性區(qū)分不同miRNA也十分重要。因此,常規(guī)的熒光定量可能難以滿足miRNA實(shí)驗(yàn)?zāi)繕?biāo)所需,需要選用專門針對(duì)短片段擴(kuò)增,且能高特異性準(zhǔn)確定量的熒光定量試劑。

             

             

            miRNA的定量檢測(cè)不僅可以選用染料法熒光定量,也可選用適宜的探針法熒光定量。

             

             
            常見DNA的染料法熒光定量檢測(cè)
             
             
            市面上常見的染料法熒光定量試劑均可滿足常見DNA的熒光定量檢測(cè),但需要注意的是,由于染料法熒光定量中染料結(jié)合任意雙鏈DNA的特性,除需要精心設(shè)計(jì)引物和進(jìn)行熔解曲線分析以外,最好選用保證靈敏度和特異性雙兼顧的染料法熒光定量試劑,減少因?yàn)镈NA擴(kuò)增酶本身特異性原因造成的非特異擴(kuò)增。

             

             

             
            不同應(yīng)用的探針法熒光定量
             
            探針法熒光定量按照檢測(cè)靶標(biāo)數(shù)量可分為單重?zé)晒舛縋CR和多重?zé)晒舛縋CR。單重?zé)晒舛縋CR相對(duì)來說比較簡(jiǎn)單,即在單個(gè)孔中通過一次PCR反應(yīng)針對(duì)一個(gè)基因進(jìn)行擴(kuò)增檢測(cè)。而多重?zé)晒舛縋CR則是在單孔中通過一次PCR反應(yīng)同時(shí)針對(duì)多個(gè)靶標(biāo)進(jìn)行擴(kuò)增,利用一定的檢測(cè)方式實(shí)現(xiàn)對(duì)多個(gè)靶標(biāo)進(jìn)行檢測(cè)。那么,在實(shí)際使用時(shí),有什么具體的差別呢?

             

             
            場(chǎng)景模擬
             
             
            采用相對(duì)定量法分析并確定某個(gè)生物體經(jīng)過藥物處理后目的基因的表達(dá)情況。采用單重?zé)晒舛縋CR試劑,則每個(gè)孔中只有一個(gè)基因(內(nèi)參基因或目的基因)擴(kuò)增,若技術(shù)重復(fù)為三次,則需要將樣品分成6份,3個(gè)用于內(nèi)參基因檢測(cè),3個(gè)用于目的基因檢測(cè),用以檢測(cè)目的基因的表達(dá)情況。而采用多重?zé)晒舛縋CR,進(jìn)行三次技術(shù)重復(fù),僅需將樣品分成3份,3個(gè)孔中通過用一個(gè)PCR反應(yīng)擴(kuò)增內(nèi)參基因和目的基因,從而檢測(cè)目的基因的表達(dá)情況。

            多重?zé)晒鈾z測(cè),可以通過單個(gè)PCR反應(yīng)中進(jìn)行多個(gè)基因的擴(kuò)增從而減少qPCR反應(yīng)所需要的樣品量,且該方式和單重?zé)晒舛繖z測(cè)一樣靈敏準(zhǔn)確。除了節(jié)省樣本量外,還可節(jié)省試劑以及設(shè)置實(shí)驗(yàn)程序和分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果所需要的時(shí)間。單孔擴(kuò)增多個(gè)基因也可最大限度地減少移液誤差。

            使用多重?zé)晒舛縋CR也有需要注意的事項(xiàng),其中最為重要的是,需要保證不同基因在單重?zé)晒舛糠磻?yīng)中和多重?zé)晒舛糠磻?yīng)中的結(jié)果是一致的。尤其是擴(kuò)增的基因中同時(shí)存在著低豐度表達(dá)基因和高豐度表達(dá)基因。

             

             
            兩步RT-qPCR與一步RT-qPCR的區(qū)別
             
            兩步RT-qPCR首先在一管中使用反轉(zhuǎn)錄酶將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,通常選用隨機(jī)引物、oligo dT或基因特異性引物進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。完成反轉(zhuǎn)錄后,吸取約10%左右的cDNA用于后續(xù)熒光定量PCR。

             

             

             
            兩步法RT-qPCR的優(yōu)點(diǎn)
             
             
            • cDNA量充足:反轉(zhuǎn)錄后產(chǎn)生的cDNA可選擇通過稀釋或者直接使用的方式滿足多次實(shí)時(shí)熒光定量實(shí)驗(yàn);

            • 滿足多靶標(biāo):通過oligo dT和隨機(jī)引物,可以從單個(gè)RNA樣本中擴(kuò)增多個(gè)靶標(biāo)。

             

             
            兩步法RT-qPCR的缺點(diǎn)
             
             
            • 便捷性差:兩步反應(yīng)需要更多的處理,不太適合高通量應(yīng)用;

            • 污染風(fēng)險(xiǎn):由于每個(gè)步驟都需要使用單獨(dú)的管子,污染的風(fēng)險(xiǎn)增加;

            • cDNA產(chǎn)物中殘留試劑的抑制:反轉(zhuǎn)錄酶和反轉(zhuǎn)錄緩沖液殘留會(huì)一定程度抑制熒光定量PCR,因此在熒光定量PCR中建議僅使用10%的cDNA進(jìn)行反應(yīng)。若稀釋不當(dāng),相關(guān)殘留組分可能會(huì)抑制DNA聚合酶。

             

            當(dāng)起始模板是RNA時(shí),可選用一步RT-qPCR進(jìn)行定量檢測(cè)。和常規(guī)的兩步RT-qPCR不同的是,該方法在同一管封閉狀態(tài)下,完成了反轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR,節(jié)省了操作步驟和操作時(shí)間,并減少了反復(fù)開蓋帶來的風(fēng)險(xiǎn)?;蛱禺愋砸锸潜仨毜?,用于反轉(zhuǎn)錄和定量擴(kuò)增。若采用Oligo dT或隨機(jī)引物將會(huì)在一步法中產(chǎn)生非特異性產(chǎn)物并減少目標(biāo)產(chǎn)物的量。

             

             

             
            一步法RT-qPCR的優(yōu)點(diǎn)
             
             
            • 減少污染:一管一步式可防止在反轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR階段之間引入污染物;

            • 便捷:移液步驟減少,手動(dòng)操作時(shí)間減少;

            • 高通量檢測(cè):每個(gè)樣本獲得結(jié)果的總時(shí)間縮短且可重現(xiàn)性高;

            • 靈敏度高:所有產(chǎn)生的第一鏈cDNA都可用于實(shí)時(shí)PCR擴(kuò)增,一定程度上提高靈敏度。

             

             
            一步法RT-qPCR的缺點(diǎn)
             
             
            • 二聚體風(fēng)險(xiǎn)增加:上下游基因特異性引物在42℃-50℃下更易發(fā)生二聚體聚合,從而導(dǎo)致非特異擴(kuò)增;

            • 檢測(cè)靶標(biāo)數(shù)少:單一RNA模板能夠檢測(cè)的靶標(biāo)數(shù)量相對(duì)較少。

             

            以上是對(duì)不同熒光定量PCR方法的介紹,相信小伙伴們通過小翌的介紹,對(duì)如何選擇適合自己的熒光定量PCR方法已經(jīng)有一定的了解啦。關(guān)于如何做好qPCR實(shí)驗(yàn),小翌會(huì)陸續(xù)在公眾號(hào)里傳授秘籍噠,敬請(qǐng)期待哦。

             

             
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            cDNA合成預(yù)混液,含gDNA去除(下游應(yīng)用qPCR)

            Hifair® III 1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR (gDNA digester plus)

            11141ES

            最長(zhǎng)可滿足19.8 kb cDNA合成試劑盒,含gDNA去除(下游應(yīng)用PCR/qPCR)

            Hifair® III 1st Strand cDNA Synthesis Kit(gDNA digester plus)

            11139ES

            常規(guī)30 min反轉(zhuǎn)預(yù)混液,含gDNA去除(下游應(yīng)用qPCR)

            Hifair® II 1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR (gDNA digester plus)

            11123ES

            miRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(加A法)

            Hifair®  miRNA 1st Strand cDNA Synthesis Kit (加A法)

            11148ES

             

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