1. 對于動物組織和植物器官，樣本較多或取樣時間間隔太長則需先將樣本放入液氮速凍冷存；若未能及時進行蛋白樣品制備，可液氮速凍后，存入-80℃保存約六個月或浸入液氮罐保存約一年。

2. 對于細胞和一些微生物樣本，可去除培養(yǎng)基后，加裂解液制備蛋白樣品；若未能及時制備蛋白樣品，去除培養(yǎng)基后，將其液氮速凍后保存于-80℃（約一個月）或保存于液氮（約三個月）。

3. 所有樣本均不建議保存于-20℃。-20℃時，組織、細胞內(nèi)的水會結(jié)晶，細胞活性和組織微觀結(jié)構(gòu)會受到傷害，生物大分子受到組織、細胞內(nèi)多種因素的影響，穩(wěn)定性可能會降低。

一般為了提取到足夠的蛋白以及更容易地提取蛋白，需要準備足夠量的樣本，要求樣本量為細胞>10⁶個，組織>30mg，菌體濕重>10mg，植物>100mg，血清>50µL。蛋白提取的原則：低溫快速，裂解充分。

下面對一些常用樣本的蛋白提取過程進行簡單描述：

1. 細胞樣本

一般樣本為1×10⁶～1×10⁷個細胞，根據(jù)細胞量多少或不同細胞中蛋白含量的多少所加裂解液的量也不相同，一般1×10⁶個細胞，加裂解緩沖液100~200µL，具體實驗操作時參照以上比例，可進行適當調(diào)整。

1) 懸浮細胞：收集培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中的細胞，4℃條件下1000~3000rpm，離心3~5min，留下細胞沉淀，去除細胞培養(yǎng)基，然后用預冷的0.01M PBS（即1×PBS）輕洗2次，4℃條件下1000~3000rpm，離心3~5min，去除上清，取用細胞沉淀，按照上述參考比例加入適量裂解緩沖液，吹打混勻，冰上裂解15~30min。

2) 貼壁細胞：直接去除培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基，用預冷的1×PBS輕洗2次，去除PBS，加入適量裂解緩沖，用細胞刮刮下細胞，連同裂解緩沖液一起收集，吹打混勻，冰上裂解15~30min。或者還有一種方法是直接用細胞刮刮下細胞，連同培養(yǎng)基一起收集，后續(xù)過程同懸浮細胞；再有一種方法，是用胰酶消化細胞后，收集細胞，離心沉淀，用預冷的PBS輕洗細胞沉淀，后續(xù)過程同懸浮細胞，但胰（蛋白）酶消化的方法不適用于目的蛋白為細胞膜上的膜蛋白，會造成影響。

2. 組織樣本

一般動物組織樣本，按照1mg組織加入10µL裂解液的比例進行添加，不同的組織蛋白含量也不同，需要調(diào)整添加量。去除組織樣本上的脂肪（可用預冷的眼科剪、鑷子去除）、血液（用預冷的PBS清洗）等雜質(zhì)，防止造成污染，產(chǎn)生干擾。然后對處理好的樣本，加入裂解緩沖液，用預冷的眼科剪在冰上將其剪碎，可以加入鋼珠后，高速振蕩研磨儀進行破碎。對于骨、肌肉、皮膚、尾巴、韌帶組織等或硬度大或韌性強的樣本，可以先試著剪碎，再進行液氮研磨后加入適量裂解液。組織樣本處理后，冰上放置15~30min。

3. 冰上放置裂解的同時，需要加入適量蛋白酶抑制劑來減少蛋白酶的水解作用，磷酸化蛋白的提取還需要加入蛋白磷酸酶抑制劑。

4. 冰上放置裂解后，建議再進行超聲處理，經(jīng)過超聲處理，裂解更充分。

5. 如有特殊的樣本或者特殊的目的蛋白，常規(guī)方法難以提取，建議查閱相關(guān)文獻，參照文獻上的配方和步驟提??；若最后未找到相關(guān)資料，可購買商品化的試劑盒。