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            干貨 │ 基因編輯探秘系列之技術(shù)篇

            來(lái)源:翌圣生物科技(上海)股份有限公司   2024年04月22日 19:37  

            在上期的“基因編輯探秘系列之原理篇”中,小翌已經(jīng)詳細(xì)介紹了CRISPR系統(tǒng)的分類(lèi)、機(jī)制和原理。本篇文章將為大家介紹CRISPR技術(shù)的生物形式和遞送技術(shù)。


             

             

            CRISPR技術(shù)的生物形式

             

            為了實(shí)現(xiàn)基因組編輯,CRISPR/Cas系統(tǒng)的組件需要進(jìn)入靶細(xì)胞的細(xì)胞核中發(fā)揮作用,可以通過(guò)遞送不同形式的Cas和向?qū)NA(gRNA)來(lái)實(shí)現(xiàn),包括質(zhì)粒DNA(pDNA),mRNA或Cas核糖核蛋白(RNP)三種生物形式。

             

            01

            pDNA形式

            pDNA通常被用作非病毒DNA傳遞的載體,其介導(dǎo)的CRISPR技術(shù)是將Cas9蛋白和gRNA的基因序列融入單個(gè)或多個(gè)pDNA載體之中。因pDNA具有易構(gòu)建、操作簡(jiǎn)便以及成本效益高等優(yōu)點(diǎn),成為了備受矚目的基因編輯方法。目前廣泛應(yīng)用的Cas9質(zhì)粒包含兩個(gè)表達(dá)盒,一個(gè)是密碼子優(yōu)化的Cas9,一個(gè)是嵌合的gRNA。與我們細(xì)胞內(nèi)遺傳信息的流動(dòng)一致,含有CRISPR系統(tǒng)元件的pDNA需先進(jìn)入細(xì)胞核,隨后轉(zhuǎn)錄成相應(yīng)的mRNA,最后被轉(zhuǎn)移到細(xì)胞質(zhì)中以啟動(dòng)后續(xù)的蛋白質(zhì)合成過(guò)程。

             

            02

            mRNA形式

            mRNA介導(dǎo)的CRISPR基因編輯技術(shù),其核心在于將Cas9 mRNA與gRNA共同精準(zhǔn)地遞送至靶細(xì)胞。相較于傳統(tǒng)的pDNA轉(zhuǎn)染方式,mRNA的遞送方式能夠更為迅速地啟動(dòng)蛋白質(zhì)表達(dá)過(guò)程。與pDNA的應(yīng)用策略不同,基于mRNA的編輯策略要求同時(shí)遞送Cas9 mRNA和gRNA這兩種關(guān)鍵的組分。Cas9 mRNA的制備主要依賴(lài)于體外轉(zhuǎn)錄(IVT)技術(shù),并經(jīng)過(guò)加帽和加尾修飾,以確保其穩(wěn)定性和翻譯效率。gRNA作為另一重要組件,存在雙鏈和單鏈兩種形式。雙鏈形式的gRNA由crRNA和tracrRNA共同構(gòu)成,這兩部分需要通過(guò)退火過(guò)程形成穩(wěn)定的復(fù)合物。在實(shí)際應(yīng)用中,可以通過(guò)化學(xué)合成的方式分別制備crRNA和tracrRNA,進(jìn)而組裝成完整的雙鏈gRNA。而單鏈形式的gRNA則是將crRNA和tracrRNA巧妙地融合成一個(gè)單一的分子,無(wú)需退火過(guò)程。單鏈gRNA可以通IVT或化學(xué)合成的方式獲得,兩種方法各有利弊,可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求進(jìn)行靈活選擇。

             

            IVT作為一種廣泛應(yīng)用的gRNA生產(chǎn)方法,因其成本效益高、產(chǎn)量大以及操作簡(jiǎn)便等優(yōu)點(diǎn),在實(shí)驗(yàn)室中得到了廣泛的推廣和應(yīng)用?;瘜W(xué)合成gRNA是利用高通量化學(xué)合成平臺(tái)來(lái)完成的,通過(guò)在gRNA的5’和3’端各加入3個(gè)硫代和甲氧基修飾,不僅可以提高gRNA的穩(wěn)定性,還能有效降低脫靶效應(yīng),從而提高基因編輯的精確性和安全性。

            03

            RNP形式

            在CRISPR/Cas系統(tǒng)的應(yīng)用中,直接遞送Cas9蛋白與gRNA,從而繞過(guò)pDNA或mRNA在細(xì)胞內(nèi)部的轉(zhuǎn)錄與翻譯過(guò)程,無(wú)疑是實(shí)現(xiàn)高效基因編輯的優(yōu)選方法。這種基于蛋白的遞送方式同樣依賴(lài)于兩個(gè)核心成分:Cas9核酸酶與gRNA,首先將Cas9蛋白與gRNA結(jié)合,形成帶有負(fù)電荷的Cas9/gRNA核糖核蛋白(Cas9 RNP)復(fù)合物,隨后將Cas9 RNP作為單一組分進(jìn)行遞送。這種技術(shù)不僅簡(jiǎn)化了操作過(guò)程,更提高了基因編輯的效率和準(zhǔn)確性。

             

            圖1. CRISPR-Cas9的三種生物形式[1]

             

             

             

            三種生物形式的差異

            每種CRISPR系統(tǒng)的生物形式都有的物理、化學(xué)、生理特性。

             

            01

            穩(wěn)定性

            Cas9 pDNA表現(xiàn)出最高的穩(wěn)定性,相比之下,mRNA的穩(wěn)定性較差,可通過(guò)對(duì)其核苷酸進(jìn)行化學(xué)修飾提升mRNA的穩(wěn)定性。Cas9 RNP由蛋白質(zhì)和gRNA組成,其結(jié)構(gòu)使得它容易受到蛋白酶和RNases的降解,因此是最不穩(wěn)定的形式。

             

            02

            遞送方式

            當(dāng)Cas9的pDNA進(jìn)入細(xì)胞后,它需經(jīng)過(guò)轉(zhuǎn)錄和翻譯的過(guò)程,最終產(chǎn)生Cas9蛋白。而Cas9的mRNA則更為直接,僅需被傳遞至細(xì)胞質(zhì)中,便可啟動(dòng)翻譯過(guò)程生成Cas9蛋白。隨后Cas9蛋白與gRNA組裝為復(fù)合體發(fā)揮編輯作用。相較之下,RNP形式能夠直接入核進(jìn)行編輯,無(wú)需經(jīng)歷上述復(fù)雜的轉(zhuǎn)錄和翻譯過(guò)程。因此,遞送Cas9 RNP成為了細(xì)胞基因組編輯中最為直接且高效的策略,通常也被認(rèn)為是最為理想的編輯方法。

             

            03

            脫靶風(fēng)險(xiǎn)

            在基因組編輯應(yīng)用中,CRISPR/Cas復(fù)合物僅在基因組修飾發(fā)生期間暫時(shí)需要,其在細(xì)胞中過(guò)度存在會(huì)增加脫靶事件的風(fēng)險(xiǎn)。Cas9 RNP和mRNA在細(xì)胞內(nèi)的存在時(shí)間相對(duì)較短,有助于降低脫靶效應(yīng)的潛在風(fēng)險(xiǎn)。而Cas9 pDNA能夠介導(dǎo)更長(zhǎng)時(shí)間的基因表達(dá),可能會(huì)增加脫靶編輯事件發(fā)生的風(fēng)險(xiǎn)。

             

            04

            Cas蛋白尺寸

            由于常用的Cas9, Cas12a和Cas13a大小接近4kb, 而用于遞送基因編輯器到體內(nèi)的AAV系統(tǒng)的包裝上限約為4.7 kb,因此尋找更小的基因編輯系統(tǒng)對(duì)于其高效體內(nèi)遞送具有重要意義。目前不同的Cas系統(tǒng)均有小型Cas蛋白被開(kāi)發(fā),如Cas9系統(tǒng)中來(lái)自金黃色釀膿葡萄球菌中的SaCas9(1000多個(gè)氨基酸);Cas12系統(tǒng)中的AaCas12b和BhCas12b(1100多個(gè)氨基酸);Cas14(又稱(chēng)Cas12f1,500個(gè)氨基酸) 、Cas12j(又稱(chēng)CasΦ,700氨基酸);Cas13系統(tǒng)中的Cas13bt(~800氨基酸),基因編輯已進(jìn)入迷你時(shí)代。

             

            CRISPR/Cas系統(tǒng)常見(jiàn)的三種應(yīng)用模式pDNA、mRNA和RNP各有優(yōu)缺點(diǎn)。從張鋒、劉如謙的最新發(fā)文來(lái)看,未來(lái)RNP形式的蛋白遞送或?qū)⒊蔀槔^mRNA之后的下一個(gè)焦點(diǎn)。

             

            表1.CRISPRs生物形式對(duì)比

             

             

            CRISPR系統(tǒng)的三種遞送技術(shù)

            CRISPR系統(tǒng)的生物形式各異,因此其遞送方法也呈現(xiàn)出多樣性。目前,CRISPR/Cas9系統(tǒng)的遞送策略已發(fā)展出多種方法,主要分為三大類(lèi)別:生物遞送方法、化學(xué)遞送方法以及物理遞送方法。

             

            在生物遞送方法中,常利用腺相關(guān)病毒(AAV)載體、慢病毒載體等作為傳遞CRISPR/Cas9系統(tǒng)的媒介,這些載體具有生物相容性好、轉(zhuǎn)染效率高等優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于基因編輯領(lǐng)域。

             

            化學(xué)遞送方法則主要依賴(lài)脂質(zhì)納米顆粒(LNP)等納米材料作為載體,它們能夠高效地封裝CRISPR/Cas9系統(tǒng)并將其遞送至細(xì)胞內(nèi),同時(shí)具有較高的靶向性和生物安全性。

             

            物理遞送方法則包括電穿孔、顯微注射等技術(shù),這些方法通過(guò)物理手段將CRISPR/Cas9系統(tǒng)直接導(dǎo)入細(xì)胞內(nèi)部,雖然操作復(fù)雜且對(duì)細(xì)胞損傷較大,但在某些特定應(yīng)用場(chǎng)景下仍具有的優(yōu)勢(shì)。

            2. CRISPR技術(shù)不同的遞送方式[2]

             

            01

            病毒載體

            在CRISPR-Cas9系統(tǒng)中,病毒載體扮演著至關(guān)重要的角色。其中,AAV、慢病毒以及桿狀病毒載體都是常用的遞送工具。值得一提的是,AAV已經(jīng)成為體內(nèi)基因治療領(lǐng)域廣泛應(yīng)用的遞送載體,并成功獲得批準(zhǔn),遞送CRISPR組件至人體用于疾病治療。

             

            AAV之所以備受青睞,源于它能夠輕易地跨越物種屏障感染細(xì)胞,同時(shí)其免疫原性極低,大大降低了引發(fā)炎癥反應(yīng)的風(fēng)險(xiǎn)。然而,任何事物都有其局限性,AAV載體的最大包裝容量?jī)H為4.7kb,這對(duì)于體積龐大的CRISPR/Cas9基因編輯系統(tǒng)來(lái)說(shuō),無(wú)疑是一個(gè)巨大的挑戰(zhàn)。尤其是當(dāng)Cas9蛋白攜帶效應(yīng)蛋白時(shí),更是需要采取特殊的修改措施,如使用體積較小的SaCas9或?qū)⑦f送系統(tǒng)分割為兩個(gè)載體,才能實(shí)現(xiàn)在AAV載體中的有效加載。

             

            慢病毒作為能感染分裂和非分裂細(xì)胞的逆轉(zhuǎn)錄病毒,也常用作遞送載體。由于慢病毒的10kb負(fù)載能力,整個(gè)CRISPR/Cas9系統(tǒng)都可以加載到其中,但慢病毒隨機(jī)整合入宿主基因組可能引發(fā)免疫反應(yīng),甚至致癌。

             

            02

            脂質(zhì)納米顆粒(LNP)

            盡管病毒載體遞送系統(tǒng)已將CRISPR技術(shù)應(yīng)用于臨床,但其療效仍受限于多重因素,如患者免疫反應(yīng)、載荷大小限制、重復(fù)給藥難度及長(zhǎng)期基因表達(dá)等問(wèn)題。因此,科研人員正積極探索新的遞送策略,其中LNP-mRNA等非病毒系統(tǒng)備受矚目。

             

            脂質(zhì)載體是一種很有前景的CRISPR-Cas9系統(tǒng)遞送載體,通常由四種脂類(lèi)組成:陽(yáng)離子型(或電離型)脂類(lèi)、聚乙二醇脂類(lèi)、輔助磷脂和膽固醇。LNP的核心技術(shù)在于其具有pH依賴(lài)性的陽(yáng)離子化脂質(zhì)。在遞送階段,這種脂質(zhì)能夠在中性pH環(huán)境下保持中性狀態(tài),與周?chē)某煞趾椭C共處。然而,一旦進(jìn)入酸性環(huán)境,如細(xì)胞內(nèi)的內(nèi)體,它便會(huì)迅速轉(zhuǎn)變?yōu)殛?yáng)離子狀態(tài)。這種電荷狀態(tài)的轉(zhuǎn)變不僅能夠誘導(dǎo)粒子解離,還能夠破壞核內(nèi)體膜,從而大大增強(qiáng)其從核內(nèi)體逃逸的能力。這種機(jī)制不僅提高了遞送效率,還有效地降低了全身毒性,使得LNP成為一種安全且高效的遞送工具。

             

            目前,已有多款基于LNP-RNA的療法成功獲得FDA的批準(zhǔn),這充分證明了LNP技術(shù)在實(shí)際應(yīng)用中的可行性和有效性。

             

            圖3. LNP組成[2]

             

            03

            新興遞送系統(tǒng)

            盡管LNP在臨床實(shí)踐中已展現(xiàn)出作為基因編輯納米顆粒遞送系統(tǒng)的先進(jìn)性,然而,眾多其他類(lèi)型的納米載體同樣具備潛力,可巧妙地設(shè)計(jì)以進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部。例如,聚合物納米顆粒、蛋白質(zhì)衣殼遞送系統(tǒng)以及類(lèi)病毒顆粒(VLP)等,均為這一領(lǐng)域的研究者提供了新的遞送策略。

             

            在本文中,我們向您介紹了CRISPR/Cas系統(tǒng)的三種生物形式及遞送方法,這些基礎(chǔ)知識(shí)鋪墊了對(duì)CRISPR技術(shù)的理解,為我們了解其在廣泛領(lǐng)域應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。請(qǐng)繼續(xù)關(guān)注我們的系列文章,在接下來(lái)的文章中,我們將帶您了解CRISPR/Cas技術(shù)在細(xì)胞基因治療、農(nóng)業(yè)等不同領(lǐng)域中的應(yīng)用,更多精彩內(nèi)容,不容錯(cuò)過(guò),敬請(qǐng)期待!

             

             

             

            Cas RNP相關(guān)產(chǎn)品

             

            產(chǎn)品分類(lèi)

            產(chǎn)品定位

            產(chǎn)品名稱(chēng)

            產(chǎn)品貨號(hào)

            Cas9蛋白

            spCas9含核定位信號(hào)

            Cas9 Nuclease

            14701ES

            spCas9+EGFP標(biāo)簽

            NLS-Cas9-EGFP Nuclease

            11364ES

            dCas9,無(wú)切割活性

            dCas9 Nuclease

            11351ES

            Cas12a蛋白

            Agathobacter rectalis細(xì)菌來(lái)源

            ArCas12a Nuclease

            14702ES

            氨基酸球菌來(lái)源

            Ascpf1(Cas12) Nuclease

            11352ES

            新兇手弗朗西斯菌來(lái)源

            Fncpf1(Cas12) Nuclease

            11353ES

            螺科菌來(lái)源

            Lbcpf1(Cas12) Nuclease

            11354ES

            Cas12b蛋白

            嗜酸耐熱菌來(lái)源

            AapCas12b Nuclease

            14808ES

            sgRNA合成

            體外轉(zhuǎn)錄合成sgRNA

            Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit

            11355ES

             

             

            參考文獻(xiàn):

            [1] Yi Lin, Ernst Wagner and Ulrich L?chelt, Non-viral delivery of the CRISPR/Cas system: DNA versus RNA versus RNP, Biomater. Sci., 2022, 10, 1166–1192

            [2] Taha EA, Lee J, Hotta A. Delivery of CRISPR-Cas tools for in vivo genome editing therapy: Trends and challenges. J Control Release. 2022;342:345-361.



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