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            聚合酶鏈反應(PCR)實驗問題解析

            來源:上海撫生實業(yè)有限公司   2025年02月18日 15:38  

                 聚合酶鏈反應(PCR)技術(shù)是在體外進行的由引物介導的酶促DNA擴增反應。PCR的原理是在模板DNA、PCR引物、四種脫氧核糖核苷酸(dNTP)及適當濃度的Mg2+存在的條件下,依賴于DNA聚合酶的體外酶促合成反應。兩個引物分別位于靶序列兩端,同兩條模板的3’端互補,由此限定擴增片段。PCR反應由一系列的變性→退火→延伸反復循環(huán)構(gòu)成,即在高溫下模板雙鏈DNA變性解鏈,然后在較低溫度下同過量引物退火,再在適中溫度下由DNA聚合酶催化進行延伸。理論上,經(jīng)過N次循環(huán)可使特定片段擴增到2n-1,考慮到擴增效率達不到100%,所以通常經(jīng)25到30次循環(huán)可擴增到106倍,足夠后續(xù)實驗展開。

            PCR基本步驟.jpg


            常見問題分析與解決方法:

            1、 無擴增條帶
            1)、 酶失活或在反應體系中未加入酶。Taq DNA聚合酶因保存或運輸不當而失活,往往通過更換新酶或用另一來源的酶以獲得滿意的結(jié)果。
            2)、模板含有雜質(zhì)。特別是對甲醛固定及石蠟包埋的組織常含甲酸,造成DNA脫嘌呤而影響PCR的結(jié)果。
            3)、 變性溫度是否準確:PCR儀指示溫度與實際溫度是否相符,過高酶在前幾個循環(huán)就迅速失活;過低則模板變性不徹di。
            4)、反應系統(tǒng)中污染了蛋白酶及核酸酶,應在未加Taq酶以前,將反應體系95℃加熱5-10 min。
            5)、 引物變質(zhì)失效。人工合成的引物是否正確。是否純化,或因儲存條件不當而失活。
            6)、 引物錯誤。利用BLAST檢查引物特異性或重新設(shè)計引物。
            7)、 DNA凝膠電泳時加入陽性對照,確保不是DNA凝膠和PCR程序的問題。

            2、PCR產(chǎn)物量過少
            1)、退火溫度不合適。以2度為梯度設(shè)計梯度PCR反應優(yōu)化退火溫度。
            2)、 DNA模板量太少。增加DNA模板量。
            3)、 PCR循環(huán)數(shù)不足。增加反應循環(huán)數(shù)。
            4)、 引物量不足。增加體系中引物含量。
            5)、延伸時間太短。以1 kb/min的原則設(shè)置延伸時間。
            6)、 變性時間過長。變性時間過長會導致DNA聚合酶失活。DNA模板中存在抑制劑。確保DNA模板干凈。

            3、擴增產(chǎn)物在凝膠中涂布或成片狀條帶彌散
            1)、酶量過高。減少酶量;酶的質(zhì)量差,調(diào)換另一來源的酶。
            2)、dNTP濃度過高。減少dNTP的濃度。
            3)、 MgCl2濃度過高??蛇m當降低其用量。
            4)、 模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應<50 ng,而基因組DNA則應<200 ng。
            5)、 引物濃度不夠優(yōu)化。對引物進行梯度稀釋重復PCR反應。
            6)、 循環(huán)次數(shù)過多;增加模板量減少循環(huán)次數(shù)至30,縮短退火時間及延伸時間,或改用二種溫度的PCR循環(huán)。
            7)、 退火溫度過低。
            8)、 電泳體系有問題:
            ①凝膠中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大;
            ②凝膠沒有凝固好;
            ③瓊脂糖質(zhì)量差。
            9)、若為PCR試劑盒則可能:
            ① 由于運輸儲存不當引起試劑盒失效;
            ② 試劑盒本身質(zhì)量有問題,如引物選擇、循環(huán)參數(shù)等選擇不當。
            10)、降解的陳舊模板擴增也易產(chǎn)生涂布。

            4、擴增產(chǎn)物出現(xiàn)多條帶(雜帶)
            1)、 引物用量偏大,引物的特異性不高。應調(diào)換引物或降低引物的使用量。
            2)、 循環(huán)的次數(shù)過多。適當增加模板的量,減少循環(huán)次數(shù)。
            3) 、酶的用量偏高或酶的質(zhì)量不好,應降低酶量或調(diào)換另一來源的酶。
            4)、退火溫度偏低,退火及延伸時間偏長。應提高退火溫度,減少變性與延伸時間,也可采用二種溫度的PCR擴增。以2度為梯度設(shè)計梯度PCR反應優(yōu)化退火溫度。
            5)、樣品處理不當。
            6)、 Mg2+濃度偏高,因適當調(diào)整Mg2+使用濃度。
            7)、若為PCR試劑盒,也可能時試劑盒本身質(zhì)量有問題。
            8)、 復制提前終止。使用非熱啟動的聚合酶時常有發(fā)生。冰上準備反應體系或采用熱啟動聚合酶。
            9)、 反應緩沖液未全融化或未充分混勻。確保反應緩沖液融化全并徹di混勻。
            10)、 引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設(shè)計引物。
            11)、 引物量過多。減少反應體系中引物的用量。
            12)、 模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應<50ng,而基因組DNA則應<200ng。
            13)、外源DNA污染。確保操作的潔凈。

            5、 陰性對照出現(xiàn)條帶
            試劑,槍頭,工作臺污染。使用全新的試劑和槍頭,對工作臺進行清潔。

            6.、條帶大小與理論不符
            1) 、污染。使用全新的試劑和槍頭,對工作臺進行清潔。
            2) 、模板或引物使用錯誤。更換引物和模板。
            3) 、基因亞型。對研究的基因進行序列分析和BLAST研究。

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