細胞鋪板是細胞實驗中的基礎(chǔ)操作,其目的是將細胞均勻分布在培養(yǎng)板上,以保證實驗結(jié)果的準確性和可重復(fù)性。下面為你介紹詳細操作流程:
1.實驗準備
材料:細胞懸液、培養(yǎng)基、胰酶、PBS 緩沖液、血清、96 孔板或 24 孔板等培養(yǎng)板。
器材:移液器及配套槍頭、離心機、細胞培養(yǎng)箱、超凈工作臺、倒置顯微鏡。
試劑配制:提前配制好含 10% 血清的培養(yǎng)基,若細胞貼壁性差,還需用多聚賴氨酸對培養(yǎng)板進行包被處理,即將適量多聚賴氨酸溶液加入培養(yǎng)板各孔,室溫孵育 1-2 小時,吸去溶液,用 PBS 沖洗 2-3 次,晾干備用。
2.細胞懸液制備
取出細胞:從培養(yǎng)箱中取出長滿細胞的培養(yǎng)瓶,在超凈工作臺內(nèi),用移液器吸去瓶內(nèi)舊的培養(yǎng)基。
清洗細胞:向瓶內(nèi)加入適量 PBS 緩沖液,輕輕晃動培養(yǎng)瓶,潤洗細胞 1-2 次,以去除殘留培養(yǎng)基及雜質(zhì),吸去 PBS。
消化細胞:加入適量胰酶溶液,覆蓋細胞層,將培養(yǎng)瓶置于顯微鏡下觀察,當細胞開始變圓、脫離瓶壁時,立即加入含血清的培養(yǎng)基終止消化。血清中的蛋白可中和胰酶活性,防止過度消化。
吹打細胞:用移液器反復(fù)輕柔吹打細胞層,使細胞全部分散成單細胞懸液。吹打過程要控制力度,避免產(chǎn)生過多氣泡損傷細胞。
離心收集:將細胞懸液轉(zhuǎn)移至離心管,以 1000-1500 轉(zhuǎn) / 分鐘的速度離心 3-5 分鐘,使細胞沉淀在管底。
重懸細胞:吸去上清液,加入適量新鮮培養(yǎng)基,用移液器輕柔吹打,將細胞重懸,制成均勻的細胞懸液。
3.細胞計數(shù)
稀釋細胞懸液:取少量細胞懸液,用培養(yǎng)基按 1:1 或 1:2 的比例稀釋,避免細胞濃度過高難以計數(shù)。
加載細胞懸液:將稀釋后的細胞懸液滴加在血細胞計數(shù)板的計數(shù)區(qū),注意不要產(chǎn)生氣泡,蓋上蓋玻片。
計數(shù)細胞:在顯微鏡下,計數(shù)計數(shù)板四個大格內(nèi)的細胞總數(shù)。壓線細胞遵循 “計上不計下,計左不計右” 原則,避免重復(fù)計數(shù)。根據(jù)公式計算細胞濃度:細胞濃度(個 /mL)=(四個大格細胞總數(shù) / 4)× 稀釋倍數(shù) ×10^4 。
4.細胞鋪板
計算鋪板體積:根據(jù)實驗需求和培養(yǎng)板規(guī)格,確定每孔所需細胞數(shù)量。如 96 孔板每孔一般接種 5×10^3 - 2×10^4 個細胞,24 孔板每孔接種 5×10^4 - 2×10^5 個細胞。根據(jù)細胞濃度計算所需細胞懸液體積,如細胞濃度為 1×10^5 個 /mL,96 孔板每孔需接種 1×10^4 個細胞,則每孔需加入細胞懸液體積為 100μL。
鋪板操作:用移液器吸取計算好體積的細胞懸液,加入培養(yǎng)板相應(yīng)孔中。從培養(yǎng)板一側(cè)邊緣開始,逐孔加入,避免液體濺出和產(chǎn)生氣泡。加樣過程中,若需接種多塊板,應(yīng)保持移液器操作一致,確保每孔細胞數(shù)量均勻。
輕柔混勻:加樣完成后,將培養(yǎng)板在水平桌面上輕輕晃動,或使用平板振蕩器,低速振蕩 1-2 分鐘,使細胞在孔內(nèi)均勻分布。注意振蕩幅度不宜過大,以免細胞聚集。
5.培養(yǎng)觀察
放入培養(yǎng)箱:將鋪好細胞的培養(yǎng)板放入 37℃、5% CO?的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。CO?可維持培養(yǎng)基 pH 值穩(wěn)定。
定期觀察:培養(yǎng) 2-4 小時后,在倒置顯微鏡下觀察細胞貼壁及分布情況。若發(fā)現(xiàn)細胞分布不均,可輕微調(diào)整培養(yǎng)板位置,繼續(xù)培養(yǎng)。后續(xù)每天定時觀察細胞生長狀態(tài),包括細胞形態(tài)、密度等,為后續(xù)實驗做準備。
細胞鋪板過程需嚴格遵守無菌操作原則,動作輕柔,確保細胞活性及分布均勻性,這樣才能保證實驗順利進行。
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