酶聯(lián)免疫吸附實驗材料，試劑，溶液 

1．酶標板，100μltip頭，1ml Ep管，濕盒

2．包被稀釋液（0.05mol/L碳酸鈉-碳酸氫鈉buffer,pH 9.6）碳酸鈉0.15g,碳酸氫鈉0.29g,疊氮鈉0.02g,加雙蒸水至100ml,調(diào)至pH9.6

3.封閉液(5%小牛血清/PBS溶液) 小牛血清5ml, 1*PBS(pH 7.4)95ml

4.洗滌液(PBST, pH 7.4)NaCl 0.8g, KH2PO40.02g,Na2HPO4.12H2O 0.29g, KCl0.02g,Tween20 0.05ml,疊氮鈉0.01g,加雙蒸水至100ml,調(diào)至pH 7.4

5.樣本稀釋液(PBS, pH 7.4)NaCl 0.8g, KH2PO40.02g,Na2HPO4.12H2O 0.29g, KCl 0.02g,疊氮鈉0.01g,加雙蒸水至100ml,調(diào)至pH 7.4

6.酶標第2抗體(羊抗兔)稀釋范圍1:5,000-1:100,000

7.底物液(TMB-過氧化氫尿素溶液)

① 底物液A:TMB20mg,無水乙醇10ml,加雙蒸水至100ml.

②底物液B(0.1mol/L檸檬酸-0.2mol/L磷酸二氫鈉緩沖液, pH 5.0-5.4)

 Na2HPO41.46g, 檸檬酸0.933g, 0.75%過氧化氫尿素0.64ml, 加三蒸水至100ml,調(diào)至pH 5.0-5.4

③底物A和B按1:1混合即成TMB-過氧化氫尿素溶液.

8.終止液(2mol/LH2SO4溶液)雙蒸水200ml,濃硫酸34ml,(緩慢滴加并不斷攪拌),加雙蒸水至300ml

9. 0.9%生理鹽水

操作步驟:

1.包被過程(注意設置空白對照,陰性對照):

將所用抗原用包被稀釋液稀釋到適當濃度(一般所需抗原包被量為每孔20-200μg),每孔抗原加入100μl, 置37℃,4h,或4℃,24h;棄去孔中液體.(為避免蒸發(fā),板上應加蓋或?qū)迤椒旁诘撞坑袧窦啿嫉慕饘贊窈兄?

2.封閉酶標反應孔: 5%小牛血清置37℃封閉40min.封閉時將封閉液加滿各反應孔,并去除各孔中的氣泡,封閉結(jié)束后用洗滌液滿孔洗滌3遍,每遍3min.洗滌方法:吸干孔內(nèi)反應液,將洗滌液注滿板孔,放置2min略作搖動,吸干孔內(nèi)液,傾去液體后在吸水紙上拍干洗滌次數(shù)3次

3.加入待檢測樣品(建立合適的濃度梯度):

檢測時一般采用1:50-1:400的稀釋度, 應采用較大稀釋體積進行,一般保證樣品吸取量>20μl.將稀釋好的樣品加入酶標反應孔中,每樣品至少加雙孔, 每孔100μl,置于37℃,40-60min.用洗滌液滿孔洗滌3遍,每遍3min.

4.加入酶標抗體:

酶標抗體: 根據(jù)酶結(jié)合物提供商提供的參考工作稀釋度進行. 37℃,30-60min之間.短于30min往往結(jié)果不穩(wěn)定.每孔加100μl.洗滌同前。TMB-過氧化氫尿素溶液,OPD-過氧化氫底物液系統(tǒng)次之.底物加入量:每孔100μl,置37℃避光放置3-5分鐘,加入終止液顯色

6.終止反應:

每孔加入終止液50μl終止反應,于20min內(nèi)測定實驗結(jié)果.

7.結(jié)果判斷:

OPD顯色后采用492nm波長,TMB反應產(chǎn)物檢測需要450nm波長.檢測時一定要首先進行空白孔系統(tǒng)調(diào)零.用測定標本孔的吸收值與一組陰性標本測定孔平均值的比值(P/N)表示,當P/N大于2時作為抗體的效價.(數(shù)值的大小依具體檢測要求而定.)