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            上海撫生實業(yè)有限公司
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            單克隆抗體和多克隆抗體從多方面分析區(qū)別2023/07/10
            抗體是我們實驗中zui常用到的一種物質(zhì)之一,抗體主要是分為單克隆抗體和多克隆抗體兩大類,本文從定義、制備方式、性質(zhì)特點及應(yīng)用上的區(qū)別對單抗和多抗進(jìn)行比較。一、定義上的區(qū)別機體受抗原刺激后,由淋巴系統(tǒng)的細(xì)胞(主要是B淋巴細(xì)胞分化后的漿細(xì)胞)產(chǎn)生具有特異性免疫功能球蛋白,即抗體??乖镔|(zhì)上能刺激B淋巴細(xì)胞的結(jié)構(gòu)部位叫做抗原決定簇,一個抗原具備多個抗原決定簇,只針對一個抗原決定簇起作用的漿細(xì)胞群就是一個純系,即一種克隆,由一種克隆產(chǎn)生的特異性抗體叫做單克隆抗體。機體受到抗原的刺激往往會針對抗原的多個抗
            ELISA方法的測定內(nèi)容闡明2023/07/03
            ELISA方法測定內(nèi)容包括酶和抗體活性、結(jié)合物中酶含量和IgG含量、酶與IgG摩爾比值以及結(jié)合率。1、酶與抗體的活性常用瓊脂擴散或免疫電泳法,使抗原與抗體形成沉淀線,經(jīng)PBS漂洗1天,再以蒸餾水浸泡1小時,將瓊脂凝膠片浸于酶底物溶液中著色,如果出現(xiàn)應(yīng)有的顏色反應(yīng),再用生理鹽水浸泡,顏色仍然不褪,表示結(jié)合物既有酶的活性,也有抗體活性。良好的結(jié)合物在顯色后,瓊擴滴度應(yīng)在1:16以上。另一個測定方法是用系列稀釋的酶標(biāo)抗體直接以ELISA方法進(jìn)行方陣滴定,此法不僅可以測定標(biāo)記效果,還可以確定酶標(biāo)抗體的使
            ELISA顯色及結(jié)果判斷2023/06/26
            試劑顯色時A、B液按順序加入且間隔不超過10min,如先將兩液混合再加樣則需保證等體積混合。顯色劑不宜過多,注意避光反應(yīng)。顯色是最后一步溫育反應(yīng),酶將無色底物催化反應(yīng)呈有色,反應(yīng)的溫度和時間均為影響結(jié)果的重要因素,目前市場上大多數(shù)進(jìn)口的ELISA檢測顯色溫度處于18~30℃。一定時間內(nèi),陰性孔可保持無色,但陽性孔會隨時間的延長而顯色加強。研究表明,顯色溫度對實驗結(jié)果有明顯影響,顯色溫度不同,試劑最di檢測能力差距非常大,溫度低于21℃時試劑盒對于質(zhì)控物的檢出能力下降,溫度過低導(dǎo)致結(jié)合反應(yīng)速率變慢
            抗體特異性選擇著重參考方方面2023/06/05
            抗體(antibody)免疫細(xì)胞分泌免疫物質(zhì),是哺乳動物適應(yīng)性免疫系統(tǒng)對抗病原體的核心,它是在病原體刺激下由漿細(xì)胞(效應(yīng)B細(xì)胞)所分泌的一種免疫球蛋白,能夠識別并結(jié)合特異的病原體抗原,隨后通過介導(dǎo)中和作用、調(diào)理作用、效應(yīng)T細(xì)胞殺傷等來清除病原體。隨著抗體制備與改造技術(shù)的飛速發(fā)展,抗體已經(jīng)廣泛應(yīng)用于生命科學(xué)各個領(lǐng)域,包括科學(xué)研究、診斷、治療等。特異性(specificity)的本質(zhì)含義是“Connectedwithoneparticularthingonly"即只與唯yi的特定事物相關(guān),具有專一性
            ELISA試驗洗板與沖洗技術(shù)注意要點2023/05/29
            ELISA試驗過程中正確的洗滌和沖洗方案尤其重要。在下游分析過程中,不充分、不一致和/或過度清洗會造成問題。有許多洗板的方法,包括使用自動洗板機、手動分流器或洗瓶。當(dāng)手動吸出孔中的液體時,要注意不要碰到孔的底部--吸管的尖duan應(yīng)該放在孔的一側(cè)。為了減少背景信號,清洗量需要足夠大,以去除孔中未結(jié)合的樣品和試劑。然而,過度洗滌會減少目標(biāo)信號。確保所有的孔都被平均清洗,以避免在整個檢測板上引入信號變化。要做到這一點,如果是手工清洗,請檢查移液器吸頭是否固定好,如果使用自動洗板機,所有分配和吸液的噴
            化學(xué)試劑各種類總述2023/05/24
            所謂化學(xué)試劑:就是化學(xué)實驗所用的藥劑;即化學(xué)實驗需要的化學(xué)藥劑?;瘜W(xué)品純度、級別的劃分,可以根據(jù)化學(xué)藥劑的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)和適用范圍來去確定。據(jù)此,化學(xué)試劑1級劃分為標(biāo)準(zhǔn)試劑、生化試劑、電子試劑、實驗試劑四個大類。1級標(biāo)準(zhǔn)的分類原則不但明確了質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn),而且兼顧了該化學(xué)試劑的適用范圍。2級標(biāo)準(zhǔn)是在1級分類基礎(chǔ)上更進(jìn)一步的劃分,它是1級標(biāo)準(zhǔn)的進(jìn)一步明確和限定。3級標(biāo)準(zhǔn)主要是為了與原來舊標(biāo)準(zhǔn)的對照,或者指明更加準(zhǔn)確確定的用途。在1級或2級確定后,一個化學(xué)試劑的質(zhì)量指標(biāo),和此質(zhì)量指標(biāo)所能夠適用的應(yīng)用目的也就確定
            PCR設(shè)計引物需考慮問題匯總2023/05/15
            在整個PCR體系中,引物占有十分重要的地位。PCR的特異性要求引物與靶DNA特異結(jié)合,不與其他非目的的DNA結(jié)合,PCR的靈敏性要求DNA聚合酶能與引物進(jìn)行有效的延伸,可見引物設(shè)計好壞與PCR結(jié)果密切相關(guān)。PCR設(shè)計引物需考慮問題匯總:1.酶切位點兩個酶切位點應(yīng)是載體上的,所連接片斷上沒有這兩個位點,且距離不能太近,否則往往導(dǎo)致兩個酶都切不好。因此,兩個酶切位點要緊挨在一起,只能切一個,除非恰好是與上面兩個酶在一起的酶切位點,最好隔四個核苷酸。且不能有堿基的交叉,比如AGATCTTAAG,這樣的
            血清應(yīng)用使用指南2023/05/05
            細(xì)胞培養(yǎng)液中添加的血清有牛血清、馬血清、人血清等,其中牛血清是zui常用的血清,分為胎牛血清和新生小牛血清。胎牛血清是從母牛破腹取出的胎牛中分離出的血清,價格昂貴。新生小牛血清是從剛出生的尚未哺乳的小牛中分離出來的血清,如廠家能做到這一點,新生小牛血清的質(zhì)量與胎牛血清的質(zhì)量相差不大。如小牛出生后已哺乳,從這種小牛中取出的血清中可能含有較多的生物活性物質(zhì),其質(zhì)量明顯不如前兩種。血清的質(zhì)量,種類及使用的濃度都有可能影響細(xì)胞的生長,而不同批次的血清支持細(xì)胞生長的能力也不同,尤其是對克隆細(xì)胞的生長,某些
            有關(guān)ELISA包被方式分析2023/04/23
            1、包被的條件包被用抗原或抗體的濃度,包被的溫度和時間,包被液的pH等應(yīng)根據(jù)試驗的特點和材料的性質(zhì)而選定??贵w和蛋白質(zhì)抗原一般采用pH9.6的碳酸鹽緩沖液作為稀釋液,也有用pH7.2的磷酸鹽緩沖液及pH7~8的Tris-HCL緩沖液作為稀釋液的。通常在ELISA板孔中加入包被液后,在4-8℃冰箱中放置過夜,37℃中保溫2小時被認(rèn)為具有同等的包被效果。包被的zui適當(dāng)濃度隨載體和包被物的性質(zhì)可有很大的變化,每批材料需通過實驗與酶結(jié)合物的濃度協(xié)調(diào)選定。一般蛋白質(zhì)的包被濃度為100ng/ml-20ug
            RT-PCR反應(yīng)體系詳解2023/04/20
            PCR反應(yīng)需要以雙鏈DNA作為模板,因此最初的PCR反應(yīng)用于檢測目標(biāo)樣本的基因組中是否存在特定的目的片段,但是這種以基因組DNA為模板的PCR反應(yīng)無法檢測目的基因是否在樣本中表達(dá),此外由于真核生物的基因中存在內(nèi)含子,直接通過基因組DNA進(jìn)行PCR也很難確定樣本中是否存在目的基因,針對這一問題,發(fā)展出了逆轉(zhuǎn)錄PCR的技術(shù)。RT-PCR技術(shù)原理:逆轉(zhuǎn)錄PCR(reversetranscriptionPCR,RT-PCR)是以mRNA為模板,在逆轉(zhuǎn)錄酶作用下合成cDNA,之后再進(jìn)行PCR的過程。mRN
            提高ELISA實驗檢測的特異性操作注意事項2023/04/10
            提高ELISA實驗檢測的特異性操作注意事項:1、加樣對于間接ELISA標(biāo)本一般都要進(jìn)行稀釋,如果加樣不準(zhǔn)就會造成誤差,尤其當(dāng)稀釋倍數(shù)大時,很小的誤差,會導(dǎo)致較大的相對誤差,使陰性(或弱陽性)標(biāo)本呈陽性(或陰性)。加樣時應(yīng)將所加物加在ELISA板孔的底部,避免加在孔壁上部,并注意不可濺出,不可產(chǎn)生氣泡。目前,大部分血站都已使用全自動酶免加樣系統(tǒng)處理標(biāo)本,可較好地避免以上誤差。2、洗滌在ELISA中正確的洗滌是保證得到可重復(fù)結(jié)果的關(guān)健一步,應(yīng)引起操作者重視。無論是手工操作還是機器操作,得出不正確的結(jié)
            原代細(xì)胞的培養(yǎng)基本條件2023/03/20
            原代細(xì)胞培養(yǎng)是將機體內(nèi)的某組織取出,分散成單細(xì)胞,在人工條件下培養(yǎng)使其生存并不斷生長、繁殖的方法。借助這種方法可以觀察細(xì)胞的分裂繁殖、細(xì)胞的接觸抑制、以及細(xì)胞的衰老,死亡等生命現(xiàn)象。原代細(xì)胞的培養(yǎng)條件:一、靜置貼壁細(xì)胞(包括半貼壁細(xì)胞的培養(yǎng))培養(yǎng)1、細(xì)胞要通過充分漂洗,以盡量除去消化液的毒性;2、細(xì)胞接種時濃度要稍大一些,至少為5×108細(xì)胞/L;3、培養(yǎng)基可用Eagle(MEMCorning10-010-CVR)或DMEM(Corning10-013-CVR)培養(yǎng);4、胎牛血清濃度為10%-8
            有關(guān)?PCR反應(yīng)原理詳解2023/03/13
            PCR技術(shù)的基本原理類似于DNA的天然復(fù)制過程,其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。PCR由變性--退火--延伸三個基本反應(yīng)步驟構(gòu)成:①模板DNA的變性:模板DNA經(jīng)加熱至93℃左右一定時間后,使模板DNA雙鏈或經(jīng)PCR擴增形成的雙鏈DNA解離,使之成為單鏈,以便它與引物結(jié)合,為下輪反應(yīng)作準(zhǔn)備;②模板DNA與引物的退火(復(fù)性):模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后,溫度降至55℃左右,引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結(jié)合;③引物的延伸:DNA模板--引物結(jié)合物在TaqDNA聚合酶的作用下,以
            ELISA試劑盒實驗中常用的樣本制備參考2023/03/06
            血清和血漿是elisa試劑盒實驗中常用的樣本類型,那么制備方法可參考以下.1、血清(serum)的一般制備方法可參考以下:1)、采集血液樣本,置于不含抗凝劑的收集管內(nèi)(試管或離心管)2)、室溫下靜置自然凝集30~60min,待血液凝固3)、沿收集管壁將血凝塊輕輕劃開4)、4℃放置過夜,平衡后,低溫低速離心10min(低溫:4℃;低速:人血~2000rpm、小鼠~1000rpm、大鼠~2500rpm)5)、上清即為血清,大概1ml血液能收集300-400ul血清6)、立即操作、冷藏或冷凍血清樣品2
            ELISA試劑盒實驗操作的影響2023/02/28
            ELISA測定中影響因素較多,操作過程中每個環(huán)節(jié)都會對試驗結(jié)果產(chǎn)生影響,出現(xiàn)錯誤的結(jié)果。以下是ELISA試驗操作中的影響因素:1、加樣孵育前加樣時間過長,酶試劑加出孔外,使用滴瓶滴加試劑時,滴加的角度不同和擠壓的力度不同,致使滴加的試劑量不準(zhǔn),都可導(dǎo)致試驗結(jié)果不準(zhǔn)確??刂品椒ǎ孩賹嶒灅颖具^多時,可分批次操作,以減少實驗時間延長造成的誤差;②加酶試劑后,用吸水紙吸干孔外試劑;③作定量試驗時,使用加樣器加注試劑,并經(jīng)常校正其準(zhǔn)確性,此外,要做到一份樣本一個移液頭,防止交叉污染。2、溫育溫育是ELIS
            探討PCR檢測試劑盒溫度循環(huán)參數(shù)2023/02/20
            探討PCR檢測試劑盒溫度循環(huán)參數(shù):1.變性溫度與時間PCR反應(yīng)中模板DNA的變性十分重要。只有wan全性的模板DNA和PCR產(chǎn)物雙鏈wan全解開,才能有效的和引物結(jié)合。這種結(jié)合是PCR擴增的基礎(chǔ)。變性溫度越高,時間越長變性就越充分。但溫度過高、時間過長又會影響TaqDNA聚合酶的活性,所以通常選用變性溫度為95℃30s為宜。在PCR反應(yīng)中第一個循環(huán)變性最重要,需時間較長,因模板DNA的鏈比較長。2.復(fù)性溫度與時間變性溫度是PCR反應(yīng)成敗的關(guān)鍵,復(fù)性溫度決定著PCR的特異性。溫度越低復(fù)性越好,但是
            ELISA試劑盒檢查中顯色液A和B效果分析2023/02/15
            酶聯(lián)免疫吸附試驗(enaymelikedimmunosorbent,ELISA)是20世紀(jì)70年代發(fā)展起來的一種檢查技能,因其具有靈敏性高、特異性強、操作簡略等長處,被廣泛運用于各種抗原和抗體的測定。ELISA試劑盒檢查中顯色液A和B效果分解如下:酶聯(lián)免疫確診試劑盒的底物A即是顯色劑A(含過氧化氫)為供氫體(DH2),底物B即是顯色劑B(含TMB),用于顯色。別的,常用的底物還有:AP的底物,常用的為對-硝基苯磷酸脂(PNP),其反響物為黃色的對硝基酚,測讀波長為405nm2)GOD的底物,為葡
            追蹤PCR實驗中污染源2023/02/10
            如果不慎發(fā)生污染情況,應(yīng)從下面幾條出發(fā),逐一分析,排除污染。1.設(shè)立陰陽性對照:有利于監(jiān)測反應(yīng)體系各成分的污染情況。選擇陽性對照時,應(yīng)選擇擴增弱,且重復(fù)性好的樣品,因強陽性對照可產(chǎn)生大量不必要的擴增序列,反而可能成為潛在的污染源。如果以含靶序列的重組質(zhì)粒為對照,100個拷貝之內(nèi)的靶序列就足以產(chǎn)生陽性擴增。陰性對照的選擇亦要慎重,因為PCR敏感性ji高,可以從其它方法(Sourthern印跡或點雜交等)檢測陰性的標(biāo)本中檢測出極微量的靶分子。此外,每次擴增均應(yīng)包括PCR體系中各試劑的時機對照,即包括
            ELISA試劑盒實驗測定結(jié)果看明白指引2023/01/29
            定性和定量是ELISA測定按其表示測定結(jié)果的方式分為的兩大類。定性測定是對標(biāo)本中是否存在待測抗原或抗體作出結(jié)論,分別用“陽性"和“陰性"來表示。由此可見傳染性病原體的抗原或抗體通常是用的定性測定,以此判斷特定病原體感染的存在與否。定量測定基本上是用于非病原體抗原物質(zhì)的測定,是對標(biāo)本中待測抗原的數(shù)量進(jìn)行量值測定,以具體數(shù)值來表示。定量測定,如激素、細(xì)胞因子、腫瘤標(biāo)志物、小分子藥物等FP,hCG、細(xì)胞因子等的定量測定。ELISA定性測定的“陰性"和“陽性"的判定依據(jù)是試劑盒所確定的陽性判定值(cut
            原代細(xì)胞組織塊分離培養(yǎng)操作步驟2023/01/16
            原代細(xì)胞組織塊分離培養(yǎng)操作步驟:許多實驗室喜歡用組織塊培養(yǎng)法進(jìn)行原代培養(yǎng),因為方法簡單,細(xì)胞也較容易生長。尤其是培養(yǎng)心肌,有時還可觀察到心肌組織塊搏動。細(xì)胞從組織塊邊緣向外長出并鋪滿培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶后,即可進(jìn)行傳代。操作步驟:(1)在無菌條件下,取待培養(yǎng)的組織適量,置入小燒杯中,以適量Hanks溶液清洗2~3次,去掉組織塊表面的血污。(2)用眼科剪將組織塊反復(fù)剪成0.5~1mm3的小塊。(3)再用Hanks溶液反復(fù)漂洗,直至液體不混濁為止。等組織塊下沉,將燒杯傾斜,用小吸管盡量吸除Hanks溶液。
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