多酚氧化酶（polyphenol oxidase，PPO）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/24 樣

多酚氧化酶試劑盒 抗逆

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

PPO（EC1.10.3.1）主要存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中，是一種含銅的氧化酶，能使一元酚和二元酚氧化產(chǎn)生醌，從而引起褐化，與果蔬加工、茶葉品質和組培等密切相關。

測定原理：

PPO 能夠催化鄰苯二酚產(chǎn)生醌，后者在 525nm 有特征光吸收。

組成：

自備儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

粗酶液提取：

1、細菌、細胞或組織樣品的制備：

細菌或培養(yǎng)細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數(shù)量（10⁴ 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、血清（漿）或果汁樣本的處理：

按照血清（漿）或果汁體積（ml）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議取 0.1ml 血清（漿）或果汁加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節(jié)波長至 525nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定（在EP 管中依次加入下列試劑）

37℃(哺乳動物)或 25℃（其它物種）中準確水浴 10min 后，95℃水浴 5min 充分混勻，10000g，25℃離心 10min，取上清，525nm 處檢測測定管和對照管吸光度。ΔA=A 測定管-A 對照管。

注意事項

煮沸樣本的操作：取 300μl 離心上清于EP 管中，進行 5min 95℃水浴處理；每個測定管需要設一個對照管，可以在不同對照管中加入不同樣品的粗酶液，然后集中進行 5min 95℃水浴處理。

PPO 活性計算：

1、血清（漿）或果汁PPO 活性

單位的定義：每分鐘每ml 血清（漿）或果汁在每 ml 反應體系中使 525nm 處吸光值變化

0.01 為一個酶活力單位。

PPO（U/ml）=ΔA×V 反總÷(V 液× V 樣÷V 樣總)÷0.01÷T =60×ΔA÷V 液

2、組織、細菌或細胞PPO 活性

按樣本蛋白濃度計算：

單位定義：每分鐘每 mg 組織蛋白在每ml 反應體系中使 525nm 處吸光值變化 0.01 為一個酶活力單位。

PPO（U/mg prot）=ΔA×V 反總÷（V 樣×Cpr）÷0.01÷T =60×ΔA÷Cpr

此法需要自行測定樣本蛋白質濃度。

按樣本鮮重計算：

單位定義：每分鐘每 g 組織在每ml 反應體系中使 525nm 處吸光值變化 0.01 為一個酶活力單位。

PPO（U/g 鮮重）=ΔA×V 反總÷(W× V 樣÷V 樣總)÷0.01÷T =60×ΔA÷W

按細菌或細胞密度計算：

單位定義：每分鐘每 1 萬個細菌或細胞在每ml 反應體系中使 525nm 處吸光值變化 0.01 為一個酶活力單位。

PPO（U/10⁴ cell）=ΔA×V 反總÷(500×V 樣÷V 樣總)÷0.01÷T =0.12×ΔA

V 反總：反應體系總體積，1.08ml；V 液：加入血清（漿）或果汁體積，0.1ml；V 樣：加入樣本體積，0.18ml； V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量， g；500：細胞或細菌總數(shù)，500 萬。

多酚氧化酶試劑盒 抗逆