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PT06-ProteanFect CRISPRMax Cas9小鼠原代免疫細(xì)胞基因編輯轉(zhuǎn)染試劑盒

細(xì)胞轉(zhuǎn)染技術(shù)是現(xiàn)代生物研究與基因 中的重要工具，數(shù)十年中，科研人員不斷探索發(fā)現(xiàn)、發(fā)展創(chuàng)新，逐漸從最初的病毒自然感染、化學(xué)轉(zhuǎn)染、電轉(zhuǎn)、病毒轉(zhuǎn)染，發(fā)展到到今天的基于內(nèi)源蛋白的轉(zhuǎn)染試劑，可謂開啟了轉(zhuǎn)染的新紀(jì)元。

轉(zhuǎn)染試劑前世今生

（1）早期實(shí)驗(yàn)（20世紀(jì)60年代），利用病毒作為載體將外源DNA引入細(xì)胞，開啟了對(duì)基因轉(zhuǎn)染的探索。這一時(shí)期，研究者們主要依賴自然感染進(jìn)行轉(zhuǎn)染，雖然技術(shù)相對(duì)簡(jiǎn)單，但對(duì)細(xì)胞類型的限制較大，轉(zhuǎn)染效率也不高。

（2）化學(xué)轉(zhuǎn)染（20世紀(jì)80年代），Lipofectamine的問(wèn)世。相較于傳統(tǒng)方法，Lipofectamine不僅轉(zhuǎn)染效率高，還能維持細(xì)胞活力，廣泛適用于多種細(xì)胞類型。這一技術(shù)的成功標(biāo)志著轉(zhuǎn)染領(lǐng)域的重大突破，推動(dòng)了基因表達(dá)、功能基因組學(xué)以及 干預(yù)的研究。

（3）電轉(zhuǎn)染（1980年代末）。通過(guò)短暫的電場(chǎng)脈沖，可以瞬時(shí)提高細(xì)胞膜的通透性，允許DNA等分子進(jìn)入細(xì)胞。電轉(zhuǎn)染的出現(xiàn)使得基因?qū)氲男蚀蠓嵘瑸榛?、疫苗開發(fā)和基礎(chǔ)生物研究奠定了基礎(chǔ)。

（4）病毒載體轉(zhuǎn)染（1990年代）。1990年代，研究人員利用腺病毒作為載體將外源基因轉(zhuǎn)導(dǎo)入靶細(xì)胞，這一研究為基因 和基因工程技術(shù)的發(fā)展奠定了基礎(chǔ)。同時(shí)，David Baltimore和Howard Temin在70年代的RNA病毒研究中發(fā)現(xiàn)了逆轉(zhuǎn)錄病毒的特性，使得逆轉(zhuǎn)錄病毒載體的構(gòu)建成為可能。

（5）新興技術(shù)（近年來(lái)）。近年來(lái)，細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法不斷創(chuàng)新，以應(yīng)對(duì)不同細(xì)胞類型和應(yīng)用場(chǎng)景的挑戰(zhàn)，從而提高轉(zhuǎn)染效率和細(xì)胞存活率。以內(nèi)源蛋白凝聚體技術(shù)為基礎(chǔ)的ProteanFect轉(zhuǎn)染試劑利用內(nèi)源蛋白與核酸自組裝的特性，形成穩(wěn)定的核酸-蛋白復(fù)合物，有效包裹和保護(hù)核酸分子，提升轉(zhuǎn)染效率。

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ProteanFect基于內(nèi)源蛋白的轉(zhuǎn)染試劑原理

ProteanFect是 獨(dú)·家基于內(nèi)源蛋白納米顆粒的基因遞送系統(tǒng)，其核酸遞送原理包括：核酸藥物與內(nèi)源蛋白自動(dòng)組裝形成納米顆粒（ProteanFect-核酸復(fù)合物），隨后通過(guò)細(xì)胞的主動(dòng)攝入高效進(jìn)入細(xì)胞；進(jìn)入細(xì)胞后， ProteanFect-核酸復(fù)合物可快速釋放核酸分子；釋放后的核酸在胞內(nèi)行使功能，內(nèi)源蛋白被天然降解。

ProteanFect試劑盒類型及適用細(xì)胞系

現(xiàn)有的六款轉(zhuǎn)染試劑盒：

1. PT01--ProteanFect 轉(zhuǎn)染試劑盒

2. PT02--ProteanFect Max轉(zhuǎn)染試劑盒

3. PT03--ProteanFect Max小鼠原代免疫細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑盒

4. PT04--ProteanFect CRISPR Cas9基因編輯轉(zhuǎn)染試劑盒

5. PT05--ProteanFect CRISPRMax Cas9基因編輯轉(zhuǎn)染試劑盒

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