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            Hep3B-LUC人肝癌熒光素酶標記細胞 培養(yǎng)步驟

            來源:上海琛藝實業(yè)有限公司   2020年03月08日 10:28  

            Hep3B-LUC人肝癌熒光素酶標記細胞  培養(yǎng)步驟

            細胞名稱  Hep3B-LUC人肝癌熒光素酶標記細胞 
            組織  人肝癌細胞系
            母細胞來源  ATCC
            轉染方法與標記過程的描述 慢病毒轉染Hygromycin篩選 


            質粒部分

            1.酶切載體:pGL4.10(luc2)由酶切獲得1400bp的luc2基因片斷;mCherry片段由PCR擴增獲得700-800bp左右片段;pSin-hyg-T2A載體酶切線性化。

            2.電泳和膠回收:上述酶切產物DNA電泳,TAKARA試劑盒膠回收,回收產物取少量電泳鑒定。

            3.連接載體與目的片段:使用Invitrogen T4連接酶連接luc2、mCherry片段和pSin-hyg-T2A線性化載體,連接使用20ul體系,25℃,10min。

            4.轉化:感受態(tài)菌One Shot Stbl3在冰上融化后,加入連接產物,靜置25min后在水浴42℃,45sec熱休克,后加入250ul無抗培養(yǎng)基225轉搖菌1h,將轉化的菌鋪于有氨芐抗性平板37度過夜。

            5.挑取單克隆:觀察平板后挑取15個單克隆至含2ml氨芐抗性 LB培養(yǎng)基搖菌管中,255轉搖菌6.5h。

            6.小抽質粒與鑒定:使用堿裂解法小抽,質粒用25ul含RNA酶ddH2O溶解;酶切鑒定: 重組質粒用通過酶切鑒定。

            7.熒光素表達鑒定: 重組質粒pSin-hyg-mCherry/luc2(以下簡稱Mluc) 轉染293T細胞:DNA定量后,使用PEI轉染Mluc至24孔板已預鋪的293T細胞中。轉染采用脂質體法轉染,試劑采用JetPEI (Polyplus公司)。兩管EP管中分別加入50ul生理鹽水,其中一管加入1ug量的質粒(DNA體積=1ug/DNA濃度),輕輕震蕩混勻,再輕微離心;在另一管中加入PEI 2ul輕輕震蕩混勻,輕微離心,然后把PEI管中的溶液加入含有的質粒管中,室溫孵育20min。將脂質體包繞DNA的混合液加入需要轉染的24孔內,37 ℃、5 % CO2條件下培養(yǎng),8小時后換培養(yǎng)液。

            8.報告基因檢測:Passive Lysis Agent裂解細胞,加入熒光素酶作用底物,將轉染質粒的細胞與陰性,陽性對照共同進行單報告基因檢測。

            9.質粒中抽:取1ml轉染報告基因檢測正確的菌液加入100ml氨芐抗性的LB培養(yǎng)基中搖菌過夜,使用Invitrogen試劑盒中抽,產物電泳鑒定,-20℃保存。

            慢病毒包裝部分

            1. 質粒共轉染細胞:轉染前一天,293T在10cm培養(yǎng)盤中的細胞達到90%,胰酶消化后,1:3傳入新10cm培養(yǎng)盤中。轉染時,細胞在培養(yǎng)盤中密度達到80%。采用脂質體PEI轉染法使編碼慢病毒包膜蛋白的質粒VSV G, Packaging Mix以及構建的Mluc質粒15µg共轉染。6h后換新鮮DMEM培養(yǎng)基。

            2.提取病毒上清:轉染48-72hours后,將含有病毒液的培養(yǎng)基轉移到15ml離心管中,在低溫4攝氏度條件下,3000rpm,離心10min去除片狀沉淀的細胞碎片。

            3.濃縮病毒:將病毒上清用0.45um濾器過濾至濃縮離心管中,2000rpm,4℃,15min離心。濃縮液收集于500µl離心管中,-80℃保存。

            慢病毒感染&篩選

            1.感染前一天(Day1),消化hep3B細胞并計數,將細胞鋪于24孔板中(以便在感染前細胞達到30%-50%的匯合度),37°C過夜孵化細胞。

            2.(Day2) 解凍低溫保存的慢病毒液,并且制備1:2病毒稀釋液200µl加入細胞中。

            3.向每孔加入Polybrene達到終濃度6ug/ml,晃勻孔板,37度孵化過夜。

            4.(Day3)移去含有慢病毒的培養(yǎng)基,加入500µl*培養(yǎng)基。

            5.(Day4)換液,加入300µg/ml  Hygromycin(Sigma)來選擇穩(wěn)定感染的細胞克隆。

            6.(Day4-7),每24h換液,300µg/ml Hygromycin(Sigma)來選擇穩(wěn)定感染的細胞克隆。

            維持培養(yǎng)。

            7.(Day8-12)細胞逐漸由24孔板傳入6孔板、6cm盤和10cm盤中100µg/ml Hygromycin維持培養(yǎng)。

            8. hep3B-Mluc細胞系鑒定: 取5×104細胞,用Passive Lysis裂解液裂解,加入熒光素酶作用底物,將轉染質粒的細胞與陰性,陽性對照共同進行單報告基因檢測。mCherry表達通過熒光顯微鏡觀察。

            培養(yǎng)條件 :置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,用含10%胎牛血清(FBS;    Hyclone, Tauranga, New Zealand)和1%雙抗(100 U/ ml青霉素和100 μg/ ml鏈霉素,Hyclone, Logan, UT, USA)的高糖 DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)三天(密度大概80%)按照1:3的比例傳代。
            細胞傳代所需時間:3天/代 
            篩選標記維持壓力和選擇壓力:Hygromycin 100ug/ml 和300ug/ml 。
            體外和體內實驗數據:
            hep3B-Mluc熒光顯微鏡照片(100×):
            細胞裂解液的發(fā)光值,數據—化學發(fā)光儀(Berthold Lumat LB 9501)檢測。
            活體成像:1×106皮下2周成瘤
            對于懸浮細胞,傳代可參考以下方法:
            方法一:收集細胞,1000RPM條件下離心8-10分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻,將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。
            方法二:可選擇半數換液方式,棄去半數培養(yǎng)基后,將剩余細胞懸起,將細胞懸液按1:2到1:3的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。
             
            3)細胞凍存:待細胞生長狀態(tài)良好時,可進行細胞凍存。貼壁細胞凍存時,棄去培養(yǎng)基后加入少量胰酶,細胞變圓脫落后,進行離心收集,1000RPM條件下離心8-10分鐘,去除上清,按凍存數量加入血清及DMSO,凍存比例為90%FBS+10%DMSO。
             
            PS:若客戶收到2ml小管細胞,收到細胞后,用75%酒精噴灑整個管子消毒后放到超凈臺或安全柜內,嚴格無菌操作;將小管細胞轉移至T25培養(yǎng)瓶或6cm培養(yǎng)皿,加入5ml左右*培養(yǎng)基混勻,放入培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)后查看細胞密度:若密度未超過80%,換液繼續(xù)培養(yǎng),視情況傳代或者凍存。若密度超過80%,可直接進行傳代(方法同上)。
             
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