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            Saos-2細(xì)胞|Saos-2-GFP人成骨肉瘤綠色標(biāo)記細(xì)胞 培養(yǎng)步驟

            來源:上海琛藝實(shí)業(yè)有限公司   2020年04月20日 11:19  

            一、    細(xì)胞名稱 ;Saos-2細(xì)胞|Saos-2-GFP人成骨肉瘤綠色標(biāo)記細(xì)胞 培養(yǎng)步驟

            二、    組織  人骨肉瘤細(xì)胞

            三、    母細(xì)胞來源  ATCC

            四、    轉(zhuǎn)染方法與標(biāo)記過程的描述 慢病毒轉(zhuǎn)染G418篩選 

            (一)     質(zhì)粒部分

            1.酶切載體:pGL3-SV40-luc使用NheⅠ和XBaⅠ內(nèi)切酶37度過夜酶切,切下為1400bp的luc基因片斷;同時(shí) plenti-neo使用speⅠ內(nèi)切酶37度過夜單酶切。

             

            2.電泳和膠回收:plenti-neo切開后加CIAP去磷酸化,37℃,30min;將片段luc和載體plenti-neo進(jìn)行DNA電泳,再用TAKALA試劑盒膠回收,回收產(chǎn)物取少量電泳鑒定。

             

            3.連接載體與目的片段:使用Invitrogen T4連接酶連接luc片段和plenti-neo線性化載體,連接使用20ul體系,25℃,10min。

             

            4.轉(zhuǎn)化:感受態(tài)菌One Shot Stbl3在冰上融化后,加入連接產(chǎn)物,靜置25min后在水浴42℃,45sec熱休克,后加入250ul無抗培養(yǎng)基225轉(zhuǎn)搖菌1h,將轉(zhuǎn)化的菌鋪于有氨芐抗性平板37度過夜。

             

            5.挑取單克?。河^察平板后挑取15個(gè)單克隆至含2ml氨芐抗性 LB培養(yǎng)基搖菌管中,255轉(zhuǎn)搖菌6.5h。

             

            6.小抽質(zhì)粒與鑒定:使用堿裂解法小抽,質(zhì)粒用25ul含RNA酶ddH2O溶解;酶切鑒定: 重組質(zhì)粒用SpeⅠ內(nèi)切酶37℃,2h單切,由于目的基因插入后speⅠ酶切位點(diǎn)發(fā)生融合,故不能切開者可鑒定為構(gòu)建成功的質(zhì)粒。

             

            7.熒光素表達(dá)鑒定: 重組質(zhì)粒plenti-neo-luc 轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞:DNA定量后,使用PEI轉(zhuǎn)染plenti-neo-luc至24孔板已預(yù)鋪的293T細(xì)胞中。轉(zhuǎn)染采用脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染,試劑采用JetPEI (Polyplus公司)。兩管EP管中分別加入50ul生理鹽水,其中一管加入1ug量的質(zhì)粒plenti-neo-luc(DNA體積=1ug/DNA濃度),輕輕震蕩混勻,再輕微離心;在另一管中加入PEI 2ul輕輕震蕩混勻,輕微離心,然后把PEI管中的溶液加入含有的質(zhì)粒管中,室溫孵育20min。將脂質(zhì)體包繞DNA的混合液加入需要轉(zhuǎn)染的24孔內(nèi),37 ℃、5 % CO2條件下培養(yǎng),8小時(shí)后換培養(yǎng)液。

             

            8.報(bào)告基因檢測:Passive Lysis Agent裂解細(xì)胞,加入熒光素酶作用底物,將轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的細(xì)胞與陰性,陽性對照共同進(jìn)行單報(bào)告基因檢測。

             

            9.質(zhì)粒中抽:取1ml轉(zhuǎn)染報(bào)告基因檢測正確的菌液加入100ml氨芐抗性的LB培養(yǎng)基中搖菌過夜,使用Invitrogen試劑盒中抽,產(chǎn)物電泳鑒定,-20℃保存。

            Saos-2細(xì)胞|Saos-2-GFP人成骨肉瘤綠色標(biāo)記細(xì)胞 培養(yǎng)步驟

            (二)     慢病毒包裝部分

            1. 質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染細(xì)胞:轉(zhuǎn)染前一天, 293T在10cm培養(yǎng)盤中的細(xì)胞達(dá)到90%,胰酶消化后,1:3傳入新10cm培養(yǎng)盤中。轉(zhuǎn)染時(shí),細(xì)胞在培養(yǎng)盤中密度達(dá)到80%。采用脂質(zhì)體PEI轉(zhuǎn)染法使編碼慢病毒包膜蛋白的質(zhì)粒VSV G, Packaging Mix以及構(gòu)建的plenti-neo-luc質(zhì)粒15μg共轉(zhuǎn)染。6h后換新鮮DMEM培養(yǎng)基。

             

            2.提取病毒上清:轉(zhuǎn)染48-72hours后,將含有病毒液的培養(yǎng)基轉(zhuǎn)移到15ml離心管中,在低溫4攝氏度條件下,3000rpm,離心10min去除片狀沉淀的細(xì)胞碎片。

             

            3.濃縮病毒:將病毒上清用0.45um濾器過濾至濃縮離心管中,2000rpm,4℃,15min離心。濃縮液收集于500μl離心管中,-80℃保存。

             

            (三)     慢病毒感染&篩選

            1.感染前一天(Day1),消化Soas2細(xì)胞并計(jì)數(shù),將細(xì)胞鋪于24孔板中(以便在感染前細(xì)胞達(dá)到30%-50%的匯合度,37°C過夜孵化細(xì)胞。

            2.(Day2) 解凍低溫保存的慢病毒液,并且制備1:2病毒稀釋液200μl加入細(xì)胞中。

            3.向每孔加入Polybrene達(dá)到終濃度6ug/ml,晃勻孔板,37度孵化過夜。

            4.(Day3)移去含有慢病毒的培養(yǎng)基,加入500μl*培養(yǎng)基。

            5.(Day4)換液,加入500μg/ml  G418來選擇穩(wěn)定感染的細(xì)胞克隆。

            6.(Day4-7),每24h換液,500μg/mlG418維持培養(yǎng)。

            7.(Day8-12)細(xì)胞逐漸由24孔板傳入6孔板、6cm盤和10cm盤中500μg/mlG418維持培養(yǎng)。

            8. Soas2-luc細(xì)胞系鑒定: 取5×104細(xì)胞,用Passive Lysis裂解液裂解,加入熒光素酶作用底物,將轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的細(xì)胞與陰性,陽性對照共同進(jìn)行單報(bào)告基因檢測。

             

            五、    培養(yǎng)條件 :置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,用含10%胎牛血清(FBS;    Hyclone, Tauranga, New Zealand)和1%雙抗(100 U/ ml青霉素和100 μg/ ml鏈霉素,Hyclone, Logan, UT, USA)的高糖DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)三天(密度大概80%)按照1:3的比例傳代。

            【注意事項(xiàng)】有專家感覺用αMEM培養(yǎng)基效果更好。

            六、    細(xì)胞傳代所需時(shí)間:3天/代 

            七、    篩選標(biāo)記維持壓力和選擇壓力:G418 200ug/ml 和500ug/ml 。

            八、    體外實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù):

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