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            U-2OS-LUC人骨肉瘤熒光素酶標(biāo)記細(xì)胞 處理方法

            來源:上海琛藝實業(yè)有限公司   2020年05月13日 14:51  

            U-2 OS(人骨肉瘤細(xì)胞)產(chǎn)品簡介:

            種屬人

            年齡(性別)女

            組織來源骨;骨肉瘤

            生長特性貼壁

            細(xì)胞形態(tài)上皮細(xì)胞樣

            背景描述U-2 OS細(xì)胞(原名2T)是由Ponten•J和Saksela•E在1964年從一名15歲女孩的脛骨中等分化的肉瘤中分離建立的。U-2 OS細(xì)胞與WI-38細(xì)胞共培養(yǎng)或用抗猴空泡病毒SV40、呼吸道合胞病毒RSV或腺病毒的補體結(jié)合試驗(CF法)未檢測到病毒。U-2 OS細(xì)胞表達(dá)胰島素樣生長因子I、II(IGF-I、IGF-II)受體和骨肉瘤衍生生長因子(ODGF)。

            生長培養(yǎng)基McCoy's 5A(貨號:PM150710)+10% FBS(貨號:164210-500)+1% P/S(貨號:PB180120)

            培養(yǎng)條件氣相:空氣,95%;CO2,5%

            溫度:37℃

            產(chǎn)品名稱:U-2OS-LUC人骨肉瘤熒光素酶標(biāo)記細(xì)胞 處理方法 含STR鑒定

            產(chǎn)品規(guī)格:1×10?cells/T25培養(yǎng)瓶

            U-2 OS(人骨肉瘤細(xì)胞)細(xì)胞培養(yǎng)的優(yōu)點:

            1.研究的對象是活細(xì)胞

            在實驗過程中,根據(jù)要求可始終保持細(xì)胞活力,并可長時間監(jiān)控、檢測甚至定量評估一部分活細(xì)胞的情況,包括活細(xì)胞的形態(tài)、結(jié)構(gòu)、生命活動等。

            2.研究條件可以人為控制

            pH、溫度、氧氣、二氧化碳、張力等物理化學(xué)的條件,可以根據(jù)實際需要進(jìn)行人為的控制,同時,可以施加化學(xué)、物理、生物等因素作為條件而進(jìn)行實驗觀察,這些因素同樣可以處于嚴(yán)格控制之下。

            3.研究的樣本可以達(dá)到比較均一性

            通過細(xì)胞培養(yǎng)一定代數(shù)后,所得到的細(xì)胞系則可以達(dá)到均一性而屬于同一類型的細(xì)胞,需要時,可采用克隆化等方法使細(xì)胞達(dá)到純化。

            4.研究內(nèi)容便于觀察、檢測和記錄

            采用各種研究技術(shù):如倒置生物顯微鏡、熒光顯微鏡、電子顯微鏡、流式細(xì)胞術(shù)、激光共焦顯微鏡、免疫組織化學(xué)、原位雜交、同位素標(biāo)記等各種儀器設(shè)備  

             

            四、   U-2OS-LUC人骨肉瘤熒光素酶標(biāo)記細(xì)胞 處理方法 含STR鑒定

             轉(zhuǎn)染方法與標(biāo)記過程的描述 慢病毒轉(zhuǎn)染Hygromycin篩選

             

            (一)     質(zhì)粒部分

             

            1.酶切載體:pGL4.10(luc2)由酶切獲得1400bp的luc2基因片斷;EGFP片段由PCR擴增獲得700-800bp左右片段;pSin-hyg-T2A載體酶切線性化。

             

             

             

            2.電泳和膠回收:上述酶切產(chǎn)物DNA電泳,TAKARA試劑盒膠回收,回收產(chǎn)物取少量電泳鑒定。

             

             

             

            3.連接載體與目的片段:使用Invitrogen T4連接酶連接luc2、EGFP片段和pSin-hyg-T2A線性化載體,連接使用20ul體系,25℃,10min。

             

             

             

            4.轉(zhuǎn)化:感受態(tài)菌One Shot Stbl3在冰上融化后,加入連接產(chǎn)物,靜置25min后在水浴42℃,45sec熱休克,后加入250ul無抗培養(yǎng)基225轉(zhuǎn)搖菌1h,將轉(zhuǎn)化的菌鋪于有氨芐抗性平板37度過夜。

             

             

             

            5.挑取單克隆:觀察平板后挑取15個單克隆至含2ml氨芐抗性 LB培養(yǎng)基搖菌管中,255轉(zhuǎn)搖菌6.5h。

             

             

             

            6.小抽質(zhì)粒與鑒定:使用堿裂解法小抽,質(zhì)粒用25ul含RNA酶ddH2O溶解;酶切鑒定: 重組質(zhì)粒用通過酶切鑒定。

             

             

             

            7.熒光素表達(dá)鑒定: 重組質(zhì)粒pSin-hyg-GFP/luc2(以下簡稱Gluc)轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞:DNA定量后,使用PEI轉(zhuǎn)染Gluc至24孔板已預(yù)鋪的293T細(xì)胞中。轉(zhuǎn)染采用脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染,試劑采用JetPEI (Polyplus公司)。兩管EP管中分別加入50ul生理鹽水,其中一管加入1ug量的質(zhì)粒(DNA體積=1ug/DNA濃度),輕輕震蕩混勻,再輕微離心;在另一管中加入PEI 2ul輕輕震蕩混勻,輕微離心,然后把PEI管中的溶液加入含有的質(zhì)粒管中,室溫孵育20min。將脂質(zhì)體包繞DNA的混合液加入需要轉(zhuǎn)染的24孔內(nèi),37 ℃、5 % CO2條件下培養(yǎng),8小時后換培養(yǎng)液。

             

            8.報告基因檢測:Passive Lysis Agent裂解細(xì)胞,加入熒光素酶作用底物,將轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的細(xì)胞與陰性,陽性對照共同進(jìn)行單報告基因檢測。

             

             

             

            9.質(zhì)粒中抽:取1ml轉(zhuǎn)染報告基因檢測正確的菌液加入100ml氨芐抗性的LB培養(yǎng)基中搖菌過夜,使用Invitrogen試劑盒中抽,產(chǎn)物電泳鑒定,-20℃保存。

             

             

             

            (二)     慢病毒包裝部分

             

            1. 質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染細(xì)胞:轉(zhuǎn)染前一天, 293T在10cm培養(yǎng)盤中的細(xì)胞達(dá)到90%,胰酶消化后,1:3傳入新10cm培養(yǎng)盤中。轉(zhuǎn)染時,細(xì)胞在培養(yǎng)盤中密度達(dá)到80%。采用脂質(zhì)體PEI轉(zhuǎn)染法使編碼慢病毒包膜蛋白的質(zhì)粒VSV G, Packaging Mix以及構(gòu)建的Gluc質(zhì)粒15μg共轉(zhuǎn)染。6h后換新鮮DMEM培養(yǎng)基。

             

             

             

            2.提取病毒上清:轉(zhuǎn)染48-72hours后,將含有病毒液的培養(yǎng)基轉(zhuǎn)移到15ml離心管中,在低溫4攝氏度條件下,3000rpm,離心10min去除片狀沉淀的細(xì)胞碎片。

             

             

             

            3.濃縮病毒:將病毒上清用0.45um濾器過濾至濃縮離心管中,2000rpm,4℃,15min離心。濃縮液收集于500μl離心管中,-80℃保存。

             

            培養(yǎng)步驟:
            1)復(fù)蘇細(xì)胞:將含有1mL細(xì)胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入5mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000RPM條件下離心5分鐘,棄去上清液,補加4-6mL*培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細(xì)胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜(或?qū)⒓?xì)胞懸液加入6cm皿中),培養(yǎng)過夜。第二天換液并檢查細(xì)胞密度。
            2)細(xì)胞傳代:如果細(xì)胞密度達(dá)80%-90%,即可進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
             
            1、對于貼壁細(xì)胞,傳代可參考以下方法:
            1. 棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細(xì)胞1-2次。
            2. 加1-2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養(yǎng)瓶中,置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2min,然后在顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況,若細(xì)胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加5ml以上含10%血清的*培養(yǎng)基終止消化。
            3.輕輕吹打細(xì)胞,*脫落后吸出,在1000RPM條件下離心8-10分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。
            4. 按5-6ml/瓶補加培養(yǎng)液,將細(xì)胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含5-6 ml培養(yǎng)液的新皿中或者瓶中。
            PS:若客戶收到2ml小管細(xì)胞,收到細(xì)胞后,用75%酒精噴灑整個管子消毒后放到超凈臺或安全柜內(nèi),嚴(yán)格無菌操作;將小管細(xì)胞轉(zhuǎn)移至T25培養(yǎng)瓶或6cm培養(yǎng)皿,加入5ml左右*培養(yǎng)基混勻,放入培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)后查看細(xì)胞密度:若密度未超過80%,換液繼續(xù)培養(yǎng),視情況傳代或者凍存。若密度超過80%,可直接進(jìn)行傳代(方法同上)。

             

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